Y. YILDIRIM, V. YILMAZ, D. MUZ, T. Ç. OĞUZOĞLU

Kars Yöresinde Küçük Aile İşletmelerindeki Koyunlarda Küçük Ruminant Lentivirus Varlığının Araştırılması

Bu çalışmada, Kars yöresindeki küçük aile işletmelerinde lentivirus enfeksiyonu klinik semptomları gösteren koyunlardan alınan 24 adet kan örneğinde küçük ruminant lentivirus (KRL) varlığı araştırıldı. Alınan kan serumu örneklerinin 5 adedinde enzyme linked immunosorbent assay tekniği (ELISA) ile KRL’na karşı spesifik antikor varlığı tespit edildi. Virolojik kontrol amacıyla alınan kan örnekleri ise polimeraz zincir reaksiyonu (PZR) ile KRL yönünden kontrol edildive negatif oldukları saptandı. Elde edilen veriler, Kars yöresinde halk elinde yetiştirilen koyunlarda KRL’nin varlığınıortaya koymaktadır

Anahtar Kelimeler:

ELISA, koyun, küçük ruminant lentivirus, polimeraz zincir reaksiyonu

The Investigation of Presence of Small Ruminant Lentivirus in Sheep Belongs to Public in Kars Region

Keywords:

ELISA, koyun, küçük ruminant lentivirus, polimeraz zincir reaksiyonu,

PDF

___

Adair BM, 1986. Serological surveillance for maedi visna virus and caprine arthritis encephalitis virus in Northern Ireland. Vet Rec, 118: 422-423.
Adams DS, Klevjer-Anderson P, Carlson JL, McGuire TC, Gorham JR, 1983. Trasmission and control of caprine arthritis encephalitis virus. Am J Vet Res, 44: 1670-1675.
Alibaşoglu M, Arda M, 1975. Koyun pulmoner adenomatozisi'nin Türkiye'de durumu ile pato- lojisi ve etiyolojisinin araştırılması. TÜBİTAK VHAG Yayınları, 274.
Alkan F, Tan T, 1998. A comparative study on the diagnosis of maedi-visna infection in se- rum and colostrum samples using agar gel immunodiffusion (AGID) technique. Dtsch Tierarztl Wochenschr, 105: 276-278.
Andres D, Klein D,Watt NJ, Berriatua E, Torsteinsdottir S, Blacklaws BA, Heakiss GD, 2005. Diagnostic tests for small ruminant lentivirus. Vet Microbiol, 107: 49-62.
Burgu I, Toker A, Akçay Y, Alkan F, Yazıcı Z, Özkul A, 1990. Türkiye’de visna maedi enfek- siyonunun serolojik olarak araştırılması. Anka- ra Üniv Vet Fak Derg, 37: 538-553.
Chomczynski P, Sacchi N, 1987. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform Anal Biochem, 162(1):156-159. extraction.
Clements JE, Gdovin SL, Montelaro RC, Narayan O, 1988. Antigenic variation in lentiviral diseases. Ann Rev Immunol, 6: 139- 159.
Hat 3-5 : Araştırmada kullanılan bazı örnekler.
Crawford TB, Adams DS, Cheevers WP, 1980. Chronic arthritis in goats caused by a retrovirus. Science, 207: 997-999.
Cutlip RC, Jackson TA, Laird GA, 1977. Immunodiffusion test for ovine progressive pneumonia. Am J Vet Res, 38: 1081-1084.
Dawson M, 1980. Maedi-visna: a review. Vet Rec, 106: 212-216.
Dawson M, Biront P, Houwers DJ, 1982. Comparison of serological tests used in three state veterinary laboratories to identify maedi visna virus infection. Vet Rec, 111: 432-434.
Dohoo IR, Heaney DP, Stevenson RG, Samagh BS, Rhodes CS, 1987. The effects of maedi-visna virus infection on productivity in ewes. Prev Vet Med, 4: 417-484.
Extramania AB, Gonzalez L, Cortabarria N, Garcia M, Juste RA, 2002. Evaluation of a PCR technique for the detection of maedi- visna proviral DNA in blood, milk and tissue samples of naturally infected sheep. Small Rum Res, 44: 109–118. 15. Granoff A, Webster RG, eds., 1999. Encyclopedia of Virology. Second Edition. London: Academic Press, pp. 223-229.
Houwers DJ, Konig CDW, De Boer GF, Schake J, 1983. Maedi visna control in sheep I: Artifical rearing of colostrum deprived lambs. Vet Microbiol, 8: 179-185.
Houwers DJ, Schaake J, De Boer GF, 1984. Maedi-visna control in sheep. II. Half-yearly serological testing with culling ositive ewes and progeny. Vet Microbiol, 9: 445-451.
Houwers DJ, Konig CDW, Bakker J, De Boer MJ, Pekelder JJ, Sol J, Vellema P, De Viries G, 1987. Maedi visna control in sheep III:Results and evaluation of a voluntary control program in the Netherlands over a period of four years. Vet Quart, 9: 29-36.
Lujan L, Badiola JJ, Garcia Martin JF, Moreno B, Margas MA, Fernandez de Luco D, Perez V, 1993. Seroprevalence of maedi visna infection in sheep in the north east of Spain. Prev Vet Med, 15: 181-190.
Narayan O, Clements I, Kennedy-Stoskopt S, Shetfer, D, Royal W, 1987. Mechanisms of escape immunological Immunol, 8: 60-76. viruses from Contr Microbiol with the incidence of
Shcreuder BEC, Yonguc AD, Girgin H, Akçora A, 1988. Antibodies to maedi-visna in indigenous sheep in Eastern Turkey. Etlik Vet Mikrobiyol Derg, 6: 47-53.
Sigurdsson B, Palsson PA, Tryggvadottir A, 1952. Transmission experiments with maedi. J Infect Dis, 90: 233-241.
Tan MT, Alkan F, 2002. Türkiye'de maedi- visna enfeksiyonunun seroepidemiyolojisi ve virus izolasyonu. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 49: 45-50.
Watt NJ, King TJ, Collie D, Melntyre N, Sargan Clinicopathological investigation of primary, uncomplicated maedi-visna virus infection. Vet Rec, 131: 455-461. I, 1992.
Yavru S, Şimşek A, Levent O, Kale M, 2001. Serological survey of maedi - visna virus (MVV) infection for sheep in Turkey. In: Proceeding of X. International Symposium of Veterinary Laboratory Diagnosticians and Salsomaggiore-Palma, Italy. on Biotechnology.
Yılmaz H, Gürel A, Özgür Y, Turan N, Bilal T, Kuşçu B, Ilgaz A, Dawson MM, Morgan KL, 1998. Koyun serumlarında maedi-visna virusu antikorlarının saptanması ve bu koyunların beyin ve akciğerini histopatolojik ve bakteriyo- lojik yönden incelenmesi. III. Ulusal Veteriner Mikrobiyoloji Kongresi, 23-25 Eylül, Bursa- Türkiye.
Zink MC, Narayan O, Kennedy PG, Clements JE, 1987. Pathogenesis of visna maedi and caprine arthritis encephalitis:new leads on the mechanism of restricted virus replication and persistent Immunopathol, 15: 167-180. Vet Immunol