BRUCELLA ABORTUS VE BRUCELLA MELİTENSİS ENFEKSİYONLARINDA OLUŞAN ANTİKORLARIN RHİZOBİUM TROPİCİANTİJENİ İLE TESPİT EDİLMESİ

Brucellozisin laboratuar teþhisinde bakteriyolojik, moleküler ve serolojik testler kullanýlmaktadýr. Brucella cinsi mikroorganizmalar,16S rRNA sekans analizi sonucuna göre Rhizobium, Agrobacterium, Ochrobactrum türlerinin de içinde bulunduðu Proteobactereaceaenin2a altgrubunda yer almaktadýrlar. Bu çalýþmada, koyun ve sýðýr kan serumlarýnda (toplam 200 serum) bulunan B. abortus ve B. melitensisekarþý oluþmuþ antikorlarý teþhis etmede Rhizobium tropici (R. tropici) tüm hücre antijeni kullanýldý. R. tropici ile B. abortus ve B. melitensisarasýndaki genetik yakýnlýk Random Amplifiye Polimorfik DNA-PCR (RAPD-PCR) yöntemi ile araþtýrýldý. Hazýrlanan antijenin sensitivitesive spesifitesi, sýðýr kan serumlarý için sýrasýyla % 81.1 ve % 22.6, koyun kan serumlarý için ise sýrasýyla % 80.1 ve % 59.5 olarakhesaplandý. RAPD-PCR analizi sonucunda, genetik benzerlik B. abortus ve R. tropici arasýnda % 33.3, B. melitensis ile R. tropici arasýnda% 46.2 ve B. abortus ile B. melitensis arasýnda % 72.7 olarak hesaplandý. Sonuç olarak, B. abortus ve B. melitensis ile R. tropiciarasýndaki genetik benzerlik RAPD-PCR kullanýlarak ortaya konuldu. R. tropiciden üretilen tüm hücre antijeni ile brucellozisin serolojikteþhisinin yapýlamayacaðý fakat hayvanlarýn R. tropiciye karþý antikor geliþtirebilecekleri ve bu antikorlarýnda Brucella serolojisinde yanlýþpozitiflik sebepleri arasýnda yer alabileceði sonucuna varýldý

Detection of Anti-brucella Antibodies in Brucella abortus and Brucella melitensis Infections by an Antigen obtained from Rhizobium tropici

Laboratory diagnosis of brucellosis is made by serological, molecular or cultural methods. Brucella spp., Agrobacterium,Ochrobactrum and Rhizobium all belong to the alpha-2 subgroup of Proteobacteria as revealed by studies on 16S rRNA sceqenceanalysis. O.anthropi has been used to diagnose brucellosis. In this study, whole cell extract from Rhizobium tropici (R. tropici) wasexamined for detecting antibodies to B. abortus and B. melitensis in cattle and sheep sera (200 in total), respectively. Genetic similaritybetween the bacteria R. tropici, B. abortus and B. melitensis was also investigated by RAPD-PCR. Using the sera from cattle, sensitivityand specificity were calculated as being 81.1% and 22.6%, respecitively when the SAT considered as Gold Standard. RLATs sensitivityfor sheep sera (80.1%) was found being close to that of cattle sera (81.1%) while specivity of RLAT for sheep sera (59.5%) was quitehigher than the figure for the cattle sera (22.6%). In conclusion, use of whole cell antigen from R. tropici is not practical in sero diagnosingbrucellosis in cattle and sheep. It is also considered that some antibodies to R. tropici are also mounted in the hosts contributingmisunderstanding of the positivitiness in the serology

___

  • Alton, G.G., Jones, L.M., Angus, R.D., Verger, J.M. (1988). “Techniques for the Brucellosis Laboratory”. INRA, Paris.
  • Aras, Z., Uçan, U.S. (2002). Brusellozda Serum Selenyum Düzeyleri, Vet. Bil. Derg., 18, 63-6. Arda, M., Minbay, A., Aydýn, N., Akay, Ö., Ýzgür, M., Leloðlu, N., Kahraman, M., Ilgaz, A., Diker, S. (1997). “Özel Mikrobiyoloji”. Medisan Yayýnevi, Ankara. Bilgehan, H. (1992). “Klinik Mikrobiyolojik Taný”. Fakülteler Kitapevi, Barýþ Yayýnlarý, Ýzmir. Bricker, B., Ewalt, D.R., Macmillan, A.P., Foster, G., Brew, S. (2000). Molecular characterization of Brucella strains isolated from marine mammals. J. Clin. Microbiol., 38, 31258–1262.
  • Buxton, A., Fraser, G. (1977). Animal Microbiology volume 1, Blackwell Scienctific Publications, Edinburgh.
  • Cloeckaert, A., Tibor, A., Zygmunt, S.M. (1999). Brucella outer membrane lipoproteins Share antigenic determinants with bacteria of the family Rhizobiaceae. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 6, 627-629. Corbell, M.J., Moriyon, I. (2006). Minutes, International Committee on Systematic Bacteriology. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 56, 1169-1170.
  • De Lay, J., Mannheim W., Segers, P., Lievens, A., Denijin, M., Vanhoucke, M., Gillis, M. (1987). Ribosomal ribonucleic acid cistron similarities and taxonomic neighborhood of Brucella and CDC group Vd. Int. J. Syst. Bacteriol., 37, 35-42.
  • Doerrler, W.T., Reedy, M.C., Raetz, R.C. (2001). An Escherichia coli mutant defective in lipid export. J. Biol. Chem., 276, 11461-11464.
  • Lisle, W.G., Carmichael, L.E. (1974). A Plate Agglutination for the Rapid Diagnosis of Canine Brucellosis. Am. J. Vet. Res., 35, 905-909. Nap, J.P., Bisseling, T. (1990). Developmental biology of a plant prokaryote symbiosi: the legume root nodule. Science, 250, 948-954.
  • Nei, M., Li, W.H. (1985). Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proc. Nat. Acad. Scien. USA, 76, 5269–5273.
  • Olive, D.M., Bean, P. (1999). Principles and Applications of methods for DNA-Based Typing of Microbial Organisms, J. Clin. Microbiol., June, 1661- 1669.
  • Ridler, A.L., Leyland, M.J., Fenwick, S.G., West, D.M. (2005). Demonstration of polymorphism among Brucella ovis field isolates by pulsed-field gel electrophoresis. Vet. Microbiol., 108, 69–74. Tcherneva, E., Rijpens, N., Jersek, B., Herman, L.M.F. (2000). Differentiation of Brucella species by Random Amplified Polymorphic DNA analysis. J. App. Microbiol., 88, 69–80.
  • Uçan, U.S., Aras, Z. (2007). Konya ve Sivas illerindeki Bazý Sürülerdeki Koçlarda Brucella ovis Enfeksiyonunun Seroprevalansý. Vet. Bil. Derg., 23 (3-4), 35-38.
Avrasya Veteriner Bilimleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 1309-6958
  • Başlangıç: 1984
  • Yayıncı: Selçuk Üniversitesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

FARKLI BARINDIRMA ŞARTLARINDA YETİŞTİRİLEN KANGAL VE AKBAŞ KÖPEKLERİNDE BAZI DÖL VERİMİ ÖZELLİKLERİ

Cafer TEPELİ

KONYA'DA ÜRETİLEN SÜZME (TORBA) YOĞURTLARIN BAZI MİKROBİYOLOJİK VE KİMYASAL ÖZELLİKLERİ

K. Kaan Tekinşen, Mustafa Nizamlıoğlu, Nazif Bayar, Nihat Telli, İ. Erim Köseoğlu

BALIKLARDA BAĞIŞIKLIK SİSTEMİ

Kürşat KAV, Osman ERGANIS

BRUCELLA ABORTUS VE BRUCELLA MELİTENSİS ENFEKSİYONLARINDA OLUŞAN ANTİKORLARIN RHİZOBİUM TROPİCİANTİJENİ İLE TESPİT EDİLMESİ

Zeki ARAS, Uçkun Sait UÇAN

FARKLI SICAKLIK VE HAVA AKIM HIZINDA KURUTMANIN SUDAK BALIĞI (Stizostedion lucioperca) FİLETOLARININ KALİTE NİTELİKLERİNE ETKİSİ

Abdullah Diler, Ahmet Güner, Soner Altun, Seçil Ekici

BİR KÖPEKTE İNGUİNAL BÖLGEDE GÖRÜLEN ANJİYOLİPOM OLGUSU

Hamdi Avcı, Ahmet Aydoğan, E. Tuğrul Epikmen, Emek Tuna, Nihat Toplu

KÖPEKLERİN MERKEZİ SİNİR SİSTEMİNDE aB-KRİSTALLİN DAĞILIMININ İMMÜNOHİSTOKİMYASAL TEKNİKLE BELİRLENMESİ

Siyami Karahan, Tolga Güvenç

KOYUNLARDA PLASENTOMLARIN ULTRASONOGRAFİK ÖLÇÜMLERİ İLE PLASENTOM GELİŞİMİ VE GEBELİK YAŞININ BELİRLENMESİ

İbrahim AYDIN, H. Ahmet ÇELİK, Sait ŞENDAĞ, D. Ali DİNÇ

ÜREME SEZONU DIŞINDA LAKTASYONDAKİ KIL KEÇİLERİNDE FLOUROGESTONE ACETAT İÇEREN VAJİNAL SÜNGERLERLE ÖSTRÜSLERİN UYARILMASI; GnRH VE hCG UYGULAMALARININ DÖL VERİMİ ÜZERİNE ETKİSİ

Mustafa Kemal SARIBAY, Gökhan DOĞRUER, Yaşar ERGÜN, Fikret KARACA, Cafer Tayyar ATEŞ

MİKROSATELLİT DNA MARKÖRLERİ KULLANILARAK ATLARDA EBEVEYN TAYİNİ: BİR VAKA TAKDİMİ

Yusuf Özşensoy, Ercan Kurar, Zafer Bulut, Mehmet Nizamlıoğlu