Kürşad ÜSTÜNAKIN, Yüksel DURMAZ, Ö GÜRCAN

Orta ve Doğu Karadeniz Bölgesi Gökkuşağı Alabalığı Çiftliklerinde Yersinia ruckeri İzolasyonu ve Antibiyotik Duyarlılık Profillerinin Belirlenmesi

Bu çalışma, Orta ve Doğu Karadeniz Bölgesi’nde gökkuşağı alabalığı çiftliklerinde Yersinia ruckeri’nin varlığı, antibiyotik duyarlılıkları ve etkenin organlarda yaptığı patolojik bozuklukların incelenmesi amacıyla yapılmıştır. Çalışmada incelenen 205 alabalık örneğinin 37’sinden Y. ruckeri izolasyonu yapıldı. Tüm izolatlar; siprofloksasin ve enrofloksasine yüksek derecede (%100), okzolinik asit, streptomisin, amikasin, trimetoprim/sulfametoksazol, piperasiline, mezlosilin, sefoperazon/sulbaktam, sulfonamid ve flumekuine orta derecede (%89,2 ile %78,4 arasında), ampisilin, karbenisilin ve amoksisilin/klavulanik asit’e ise az ( %5,4 ile %24,3 arasında) duyarlı bulunmuştur. Yersinia ruckeri ile enfekte balıkların histopatolojik incelemeleri sonucunda; solungaç, kalp, karaciğer, dalak ve böbrekte ödematöz değişiklikler, kan damarlarında dilatasyon, peteşiyal kanamalar ve konjesyon belirlendi. Karaciğer, böbrek ve dalakta nekrotik odaklar tespit edildi. Akut vakalarda karaciğerde şiddetli lökosit infiltrasyonu, periportal alanlarda mononüklear hücre infiltrasyonları, böbrekte şiddetli hematopoietik doku kaybı ve dalağın normal lenfoid yapısında bozukluk gözlendi. Hastalığın akut safhasında olan balıklarda, beyin zarlarında ve medullada şiddetli konjesyon gözlendi.

Anahtar Kelimeler:

Alabalık, Yersinia ruckeri, antibiyogram, histopatoloji

Isolation of Yersinia ruckeri in Rainbow Trout Farms in Middle and East Black Sea Region and Determination of Antibiotic Susceptibility Profiles

The aims of this study were investigated existence of Yersinia ruckeri and antibiotic susceptibility profile and pathological disorders in the organs in Rainbow trout farms in Central and Eastern Black Sea regions. In the study, Y. ruckeri was isolated from 37 samples in examined 205 samples. Isolates have been found sensitive to against antibiotics; ciprofloxacin and enrofloxacin, at high degree (100%), oxolinic acid, streptomycine, amikacin, trimethoprim/sulphamethoxazole, piperacillin, mezlocillin, cefoperazone/sulbactam, sulphonamide and flumequin at medium degree (89,2% -7 8,4%), ampicillin, carbenicillin and amoxicillin/clavulanic acid at little degree (5,4% - 24,3%). At the end of the histopathological examination from rainbow trout infected with Yersinia ruckeri, the edematous changes in the gill, heart, liver, spleen and kidney, dilatation of blood vessels, petechial hemorrhages and congestion were detected. The necrotic foci were detected in the liver, kidney and spleen. In the liver severe leukocyte infiltrations, mononuclear cells accumulations in periportal area, the loss of hematopoietic tissue in the kidney and damage of normal lymphoid structure in the spleen were observed in acute cases. The severe capillary congestion in meninges and medulla of the brain were observed in fish which is in the acute phase of the disease.

Keywords:

Rainbow trout, Yersinia ruckeri. antibiogram, histopathology,

PDF

___

Akhlaghi, M. ve Yazdi, H.S. 2008. Detection and Identification of Virulent Yersinia ruckeri: The causative Agent of Enteric Redmouth Disease in Rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Cultured in Fars province, Iran. Iranian Journal of Veterinary Research, Shiraz University, 9: 4-25.
Altun, S., Onuk, E.E., Çiftçi, A., Duman, M. ve Büyükekiz, A.G. 2013. Determination of Phenotypic, Serotypic and Genetic Diversity and Antibiotyping of Yersinia ruckeri Isolated from Rainbow trout. Kafkas Üniv. Vet. Fak. Derg, 19 (2): 225-232.
Ateşoğlu, A. 1999. Gökkuşağı Alabalıklarında Yersinia ruckeri İzolasyonu, İdentifikasyonu ve Dokularda İndirekt Flouresan Antikor Testi ile Antijen Aranması. Pendik Vet. Mikrobiyol. Derg, 30(2): 43 – 53.
Austin, B. ve Austin, A.D. 1993. Enterobacteriaceae representatives. Bacterial Fish Pathogens. Ellis Horwood Limited. West Sussex, 188 – 226pp.
Avcı, H. ve Birincioğlu, S.S. 2005. Pathological findings in Rainbow trout (Oncorhyncus mykiss Walbaum, 1972) Experimentally İnfected with Yersinia ruckeri. Turk. J. Vet. Anim. Sci, 29: 1321-1328.
-
Balta, F., Çağırgan, H. ve Kayış, Ş. 2005. Kültürü Yapılan Gökkuşağı Alabalıklarından (Oncorhynchus mykiss) İzole edilen Yersinia ruckeri’nin İdenfikasyonunda API 20E Testinin Kullanılabilirliği. Türk Sucul Yaşam Dergisi, Yıl:3, 4: 434-237.
Bastardo, A., Sierralta, V., Leon, J., Ravelo, C. ve Romalde, L.J. 2011. Phenotypical and genetic characterization of Yersinia ruckeri strains isolated from recent outbreaks in farmed Rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum) in Peru. Aquaculture, 317: 229-232.
Carson, J. ve Wilson, T. 2009. Yersiniosis in Fish. Australia and New Zeland standart diagnostic procedure, Tasmania. http://www.scahls.org.au/Procedures/Documents/AQANZSDP/Yersiniosis. pdf [Erişim: 15.05.2014].
Fadaeifard, F., Sharifzadeh, A., Raissy, M., Mazrooi, H., Safari, S. ve Moumeni, M. 2014. Molecular identification of Yersinia ruckeri isolates by polymerase chain reaction test in rainbow trout Oncorhyncus mykiss. Euro. J. Exp. Bio, 4(1): 1-4.
Frerichs, N.G. ve Millar, D.S. 1993. Isolation of Bacteria. Manual for the Isolation and Identification of Fish Bacterial Pathogens. Bell & Bain Limited, Glasgow, 12 -18.
Gökçelik, G. 1993. Kirby – Bauer Antimikrobial Duyarlılık Testi. Antibakteriyel Kullanımında Temel İlkeler ve Duyarlılık Test Yöntemleri. Pfizer Yayınları, Ortaköy - İstanbul, 57 – 79.
Huang, Y., Michael, B.G., Becker, R., Kaspar, H., Mankertz, J., Schwarz, S., Runge, M. ve Steinhagen, D. 2013. Pheno and genotypic analysis of antimicrobial resistance properties of Yersinia ruckeri from fish. Vetmic, 6394. http://dx.doi.org/10.1016/j.vetmic.2013.10.026 [Erişim: 15.05.2014].
John, J.S., Kweon, H.C., Kim, J.M., Kang, S.M., Jang, H. ve Kwon, H.J. 2010. Characterization of Yersinia ruckeri isolated from the farm-cultured eel Anguila japonica in Korea. Korean J. Vet. Res, 50(1): 29-35.
Lazar, M., Vulpe, V., Guguianu, E., Lazar, R., Sarlı, G. ve Oprean, Z.O. 2010. Red Mouth Diseases in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) – a case report on Lake Trout Farm Bicaz, Romania. Bulletin UASVM, Veterinary Medicine, 67 (1): 1843-5378.
Luna, L.G. 1968. Manual of Histologic Staining. Methods of the Armed Forces Institute of Pathology. Chapter:10, Hill Book Company, Mc Graw –New York.
Öztürk, Ç.R. ve Altınok, İ. 2014. Bacterial and Viral Fish Diseases in Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 14: 275-297.
Ruangpan, L. ve Tendencia A.E. 2004. Laboratory Manual of Standardized Methods for Antimicrobial Sensitivity Tests for Bacteria Isolated from Aquatic Animals and Environment. Aquaculture. Extension Manual No 37, Southeast Asian Fisheries Development Center, Tigbauan. 5021, Iloilo, Philippines.
Sağlam, S.Y., Işık, N., Arslan, A. ve Erer, H. 2006. Erzurum Bölgesi’ndeki Gökkuşağı Alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss W, 1972) Aeromonas hydrophila ve Yersinia ruckeri İzolasyonu ve Patolojik İncelemeler. Atatürk Üniversitesi Vet. Bil. Derg, 1 (1-2) : 6-10.
Shah, A.Q.S., Karatas, S., Nilsen, H., Stenium, M.T., Colquhoun, J.D. ve Sorum, H. 2012. Characterisation and expression of the gyrA gene from quinolone resistant Yersinia ruckeri strains isolated from Atlantic salmon (Salmo salar L.) in Norway. Aquaculture, 350(353): 37-41. doi::10.1016/j.aquaculture.2012.04.022
Sierralta, V., Leon, J., Blas, D.I., Bastarda, A., Romalde, L.J., Castro, T. ve Mateo, E. 2013. Patology and identification of Yersinia ruckeri in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) from fish farms in junin, Peru. Revista Aquatic, 38: 28-45.
Stevenson, R.M. 1997. Immunization with bacterial antigens: Yersiniosis. Dev. Biol. Stand, 90: 117 – 127.
Verner-Jeffreys, D.W., Haig, S.J., Welch, T.J., Pond, M.J., Stone, D., Davies, R.L. ve Gardner, R. 2011. Characterisation of a serotype O1 Yersinia ruckeri isolate from the Isle of Man: further evidence that O antigen serotype is not a reliable indicator of virulence. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol, 3: 31-86.