Sığırlarda Brucella abortus S19 konjunktival aşısına karşı immün yanıtın izlenmesi

Brucella abortus S19 suşu sığırlarda brusellozise karşı en çok tercih edilen aşı suşlarından biridir. Bununla birlikte, B. abortus S19 aşısına bağlı immün yanıtın izlenmesi immünoreaktif bir antijeninin ve test yönteminin belirlenememesi nedeniyle zordur. Bu çalışma ile düve ve buzağılarda bu aşıya karşı gelişen humoral ve hücresel immün yanıtın aşılama sonrası örneklemenin yapıldığı 46, 85 ve 169. günlerde izlenmesi amaçlandı. Bu nedenle, humoral immünite için, lipopolisakkarit (LPS) antijenine karşı immünoglobulin izotip IgG ve IgA'nın ve hücresel immün yanıt için ise brusellerjen antijenine karşı hücresel immünyanıt göstergelerinden interferon gamma (IFNg) home-made ELISA yöntemleri ile araştırıldı. Bu çalışmada, aşılama sonrası 46. günde buzağılarda (%100) ve düvelerde (%96.6) belirgin IgG pozitifliği gözlendi, fakat IgA pozitifliği ve IFNg düzeyleri %50’nin üzerine çıkmadı. Ayrıca, IFNg tespiti için %13.3-43.3 ve IgA tespiti için %0-44 aralığında belirlenen pozitif hayvan yüzde oranları aşı takibi için yetersiz olarak belirlendi. Bu nedenle, sığırlarda B. abortus S19 konjunktival aşısının etkinlik takibinde IgG düzeyleri kullanılabilir. Diğer taraftan, immüniteyi izlemek için brusellerjen ve LPS ile birlikte yeni antijen kombinasyonlarının kullanılması durumunda testlerin duyarlılığı artacak olup, gelecekteki araştırmalar için önerilmektedir.

Monitoring of the immune response to B. abortus S19 conjunctival vaccine in cattle

Brucella abortus S19strain is one of the most preferred strains in vaccines against brucellosis in cattle. However, monitoring of the B. abortus S19 vaccine is difficult due to non availability of sustainable immunoreactive antigen and accurate test method. In this study, the humoral and the cellular immune responsesto S19 vaccine in one year old heifers and calves were monitored on post vaccination days (pvd) of 46, 85 and 169. Thus, the levels of Immunoglobulin (Ig)G and IgA isotypes against lipopolysaccharide (LPS) for humoral immunity and interferon gamma (IFNg) against brucellergen for cellular immune response were investigated by home-made ELISAs. In this study, significant IgG positivity was observed on pvd 46 in calves (100%) and heifers (96.6%), but IgA positivity and IFNg levels were not over 50%. Moreover, percentage of positive animals for IFNg (13.3-43.3%) and IgA (0-44%) have shown no significance for monitoring the vaccine throughout the study. Therefore, IgG levels can be used to monitor the efficiency of Brucella abortus S19 conjunctival vaccine in cattle. On the other hand, novel antigen combinations along with brucellergen and LPS for monitoring the immunity would enhance the sensitivity of the test and could be recommended for future investigations.

___

  • 1. Aragon V, Diaz R, Moreno E, et al. (1996): Characterization of B. abortus and B. melitensis Native Haptens as Outer Membrane O-Type Polysaccharides Independent from the Smooth Lipopolysaccharide. J Bacteriology, 178(4), 1070–1079.
  • 2. Barquero-Calvo E, Chaves-Olarte E, Weiss DS, et al. (2007): B. abortus uses a stealthy strategy to avoid activation of the innate immune system during the onset of infection. PLoS One. 2:e631.
  • 3. Brooks-Worrell BM, Splitter GA (1992):Sodium dodecyl sulfate and salt extracted antigens from various Brucella species induce proliferation of bovine lymphocytes. Infect Immun, 60(5), 2136-2138.
  • 4. Caroff M, Bundle DR, Perry MB, et al. (1984):Antigenic S-type lipopolysaccharide of Brucella abortus 1119-3. Infect Immun; 46, 384-388.
  • 5. Cha S-B, Rayamajhi N, Kang M-L, et al. (2010): Comparative study of gamma interferon production in mice immunized with outer membrane proteins and whole bacteria of Brucella abortus. Jpn J Infect Dis, 63, 49-51.
  • 6. Chand P, Chhabra R, Nagra J (2015): Vaccination of adult animals with a reduced dose of Brucella abortus S19 vaccine to control brucellosis on dairy farms in endemic areas of India. Trop Anim Health Prod, 47, 29-35.
  • 7. Chukwu CC (1986): Comparison of the brucellin skin test with the lymphocyte transformation test in bovine brucellosis. J Hyg. Camb, 96, 403-413.
  • 8. Denoel PA, Vo TK-O, Weynants VE, et al. (1997): Identification of the major T cell antigens present in the Brucella melitensis B115 protein preperation, Brucellergene OCM. J Med Microbiol, 46, 801-806.
  • 9. Dorneles EMS, Sriranganathan N, Lage AP (2015): Recent advances in Brucella abortus vaccines. Vet Res; 46(76), DOI 10.1186/s13567-015-0199-7.
  • 10. Duncombe L, Commander NJ, Erdenliğ S, et al. (2013): Investigating the Use of Protein Saver Cards for Storage and Subsequent Detection of Bovine Anti-Brucella abortus Smooth Lipopolysaccharide Antibodies and Gamma Interferon. Clin Vaccine Immunol, 20(11), 1669 –1674.
  • 11. Duran-Ferrer M, Leon L, Nielsen K, et al. (2004): Antibody response and antigen-specific gamma-interferon profiles of vaccinated and unvaccinated pregnant sheepexperimentally infected withBrucella melitensis.Vet Microbiol, 100, 219-231.
  • 12. Franc KA, Krecek RC, Hasler BN, et al. (2018): Brucellosis remains a neglected disease in the developing world: a call for interdisciplinary action. BMC Public Health, 18 (125), 1-9.
  • 13. Genç O, Büyüktanır Ö, Yurdusev N (2011): Development of an individual rapid test based on enzymatic immunofiltration assay for detection of anti–Brucella abortus antibody in bovine sera. J Vet Diagn Invest, 23, 49–56.
  • 14. Genç O, Büyüktanır Ö, Serdar G, et al. (2015): Development and validation of sandwich quantitative ELISA prototype based on the bovine IFNg for the detection of cellular immunity. Turk J Vet Anim Sci, 39(6), 724-729.
  • 15. Nielsen K, Smith P, Widdison J, et al. (2004): Serological relationship between cattle exposed to Brucella abortus Yersinia enterocoliticaO:9 and Escherichia coliO157:H7. Vet Microbiol, 100, 25-30.
  • 16. Office International des Epizooties (OIE) (2009): Bovine brucellosis, Section 2.4.3. In OIE Manual of standards for diagnostic tests and vaccines, OIE, Paris, 2009.
  • 17. Perez-Sancho M, Duran-Ferrer M, Garcio-Seco T, et al. (2014): Interferon-gamma responses in sheep exposed to virulent and attenuated Brucella melitensis strains. Vet Immun Immunopathol, 160, 123-128.
  • 18. Plommet M, Fensterbank R(1976):Vaccination against bovine brucellosis with a low dose of strain 19 administered by the conjunctival route. Serological response and immunity in the pregnant cow. Annals Vet Res, 7, 9-23.
  • 19. Stevens MG, Hennager SG, Olsen SC, et al. (1994): Serologic Responses in Diagnostic Tests for Brucellosis in Cattle Vaccinated with Brucella abortus 19 or RB51. J Clin Microbiol, 32(4), 1065-1066.
  • 20. Stevens MG, Pugh GW, Tabatabai LB (1992): Effects of gamma interferon and indomethacin in preventing Brucella abortus infections in mice. Infect. Immun, 60, 4407-4409.
  • 21. Tittarelli M, De Massis F,Bonfini B, et al. (2009): An ELISA for the evaluation of gamma interferon production in cattle vaccinated withBrucella abortusstrain RB51.Vet Ital, 45(2), 347-54.
  • 22. Wareth G, Melzer F, Weise C, et al. (2015): Proteomics-based identification of immunodominant proteins of Brucella using sera from infected hosts points towards enhanced pathogen survival during the infection. Biochem and Biophys Res Comm, 456, 202-206.
  • 23. Weynants V, Godfroid J, Limbourg B, et al. (1995): Specific bovine brucellosis diagnosis based on in vitro antigen specific gamma interferon production. J Clin Microbiol, 33, 706-712.
Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • Yayın Aralığı: 4
  • Başlangıç: 1954
  • Yayıncı: Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Serum açlığı ve ionomisin aktivasyonunun koyunlarda somatik hücre nükleer transfer embriyolarının gelişimi üzerine etkileri

Özen Banu ÖZDAŞ, Ümüt CİRİT, Mithat EVECEN, Kamber DEMİR, Sema BİRLER, Serhat ALKAN, Serhat PABUCCUOĞLU, Hatem ATALLA, Elif KARAMAN

Türkiye’de bir kedide Bartonella henselae ile ilişkili pyogranülomatöz miyokarditis ve diyaframatik myozitis

Mustafa Yavuz GÜLBAHAR, Sinem İNAL, Edward Bealmear BREITSCHWERDT, Nandhakumar BALAKRISHNAN, Ishtiaq AHMED, Alper ÇİFTCİ, Efe KARACA

Farklı çevre şartlarının bal arısı (Apis mellifera L.) bilişsel fonksiyonu ve bal mineral içeriği üzerine etkileri

Cevat NİSBET, Ahmet GÜLER, Selim BIYIK

Fare oositlerinde mayoz bölünme sırasında Abelson tirozin kinaz (c-abl) ile mekik iplikleri arasındaki in vitro iliş

Hakan ÖNER, Duygu MUTLUAY

İn vitro üretilen koyun blastosistlerinin vitrifikasyonu üzerine, ekilibrasyon medyumu ve ko-kültürün etkileri

Mithat EVECEN, Sema BİRLER, Serhat PABUCCUOĞLU, Hatem ATALLA

Damascus keçilerinde aşım sezonunda sabit zamanlı tohumlama uygulamalarında CIDR’ın etkin uygulama sürelerinin belirlenmesi

Ayşe Merve KÖSE, Fikret KARACA, Oğuzhan ÖZCAN, Nurdan COŞKUN, Cafer Tayyar ATEŞ, Ece KOLDAŞ ÜRER, M. Kemal SARIBAY, Gökhan DOĞRUER

Tavuk ve bıldırcında medulla spinalis’in intumescentia cervicalis’inde gri cevher hacim fraksiyon değerlerinin karşılaştırılması

Okan EKİM, Ahmet ÇAKIR, Doğukan ÖZEN, Çağdaş OTO, Ozan AHLAT, Caner BAKICI

Sığırlarda Mycobacterium bovis’in moleküler ve sito-histopatolojik tanı yöntemleri ile gösterilmesi ve sonuçlarının karşılaştırılması

M. Özgür ÖZYİĞİT, M. Müfit KAHRAMAN, Ezgi AKDEŞİR

Ratlarda siklofosfamidin sebep olduğu kardiyotoksisitede propolisin koruyucu rolü

Neriman ÇOLAKOĞLU, Seval YILMAZ, Emre KAYA

Sığırlarda Brucella abortus S19 konjunktival aşısına karşı immün yanıtın izlenmesi

Gülnur SERDAR, Özlem BÜYÜKTANIR YAŞ, Evrim GENÇ, Oktay GENÇ