Seçilen keçi sürülerinde gB/gE ELISA kombinasyonu ve VNT kullanılarak BoHV-1 ve CpHV-1 enfeksiyonlarının seroprevalansının araştırılması

Bu çalışmada, seçilmiş keçi sürülerinde BoHV-1 ve CpHV-1 enfeksiyonlarının seroprevalansı glikoprotein B (gB)/ glikoprotein E (gE) ELISA kombinasyonu ve virus nötralizasyon testi (VNT) kullanılarak araştırılmıştır. Bu amaçla, Bolu ilinden 546 Saanen keçisinden alınan kan serumu örnekleri ELISA ve VNT kullanılarak test edilmiştir. Her iki ELISA sistemi ile test edilen örneklerin %32.05'i (175/546) CpHV-1 antikor pozitifliğini yansıtan gB(+)/gE(-) olarak bulunurken, % 0.73'ü (4/546) BoHV-1 antikorları yönünden pozitifliği yansıtan gB(+)/gE(+) olarak belirlenmiştir. VNT ile serumların %31.86' sı (174/546) CpHV-1, %3.29'u (18/546) BoHV-1 antikorları yönünden pozitif olarak değerlendirilmiştir. Sonuç olarak, örneklenen keçi sürülerinde CpHV1 enfeksiyonu prevalansı, BoHV-1 enfeksiyonundan yüksek bulunmuştur. Keçilerde alphaherpesvirus enfeksiyonlarının tanısında gB blocking ELISA alternatif test olarak kullanılabillir bulunmuş, ancak CpHV-1 ve BoHV-1 ayrımında gE blocking ELISA ve VNT kombinasyonunun kullanılması istatisitiksel (p

Investigation of the seroprevalence of BoHV-1 and CpHV-1 infections using gB/gE ELISA combination and VNT in selected goat flocks

In this study, we have investigated the seroprevalence of alphaherpesvirus (BoHV-1 and CpHV-1) infections in selected goat flocks using glycoprotein B (gB)/glycoprotein E (gE) ELISA combination and virus neutralisation test (VNT). For this purpose, we collected blood serum samples of 546 Saanen goats from Bolu province and tested them by ELISA and VNT. Using ELISA, 32.05% (175/546) of the samples were found to be gB(+)/gE(-) for CpHV-1, whereas only 0.73% (4/546) of the samples were noted to be gB(+)/gE(+) for BoHV-1 releated infection. By performing VNT, we found 31.86% (174/546) and 3.29% (18/546) positivity for CpHV-1 and BoHV-1, respectively. In conclusion, prevalence of CpHV-1 infection was found to be higher than BoHV1 infection in sampled goat flocks. For diagnosis of alphaherpesviruses in the goats, use of gB blocking ELISA test was found to be favorable as an alternative method. On the other hand, to distinguish between the CpHV-1/BoHV-1, gE blocking ELISA in combination by VNT was found to be incompatible with the statistical analysis (p

___

  • 1. Alpay G, Tuncer P, Yesilbag K (2014): Serological distribution of some viral infections in cattle, sheep and goats in an isolated islandecosystem. Vet J Ankara Univ, 61, 43-48.
  • 2. Ataseven VS, Basaran Z, Yılmaz V, et al. (2010): Seroprevalence of parainfluenza virus-3 (PIV-3) and bovine herpesvirus type 1 (BHV-1) infections in goats of Van region. YYÜ Veteriner Fak Derg, 21, 7-9.
  • 3. Berrios PE, Mckercher DG (1975): Characterization caprine herpesvirus. Am J Vet Res, 36, 1755-1762.
  • 4. Bertolotti L, Rosamilia A, Profiti M, et al. (2013): Characterization of caprine herpesvirus 1 (CpHV1) glycoprotein E ve glycoprotein I ectodomains expressed in mammalian cells. Vet Microbiol, 164, 222-228.
  • 5. El-Azhary MA, Roy RS, Frechette JL (1979): Serological evidence of IBR and BVD infection in Caribou (Rangifer tarandus). Vet Rec, 105, 336.
  • 6. Frey HR, Liess B (1971): Vermehrungskinetik und Verwendbarkeit einer stark zytopathogenen VD-MD Virusstammes für diagnostische Untersuchungen mit der mikrotiter-Methode. Zentbl Vet Med, 18, 61-71.
  • 7. Fulton RW, Briggs RE, Payton ME, et al. (2004): Maternally derived humoral immunity to bovine viral diarrhea virus (BVDV) 1a, BVDV1b, BVDV2, bovine herpesvirus-1, parainfluenza-3 virus bovine respiratory syncytial virus, Mannheimia haemolytica and Pasteurella multocida in beef calves, antibody decline by half-life studies and effect on response to vaccination. Vaccine, 22, 643-649.
  • 8. Guercio A, Greco G, Lanizzoto G, et al. (1998): Valutazione della diffusione di anticorpi anti Herpes Virus della capra in allevamenti caprini della Sicilia. Atti. SIPAOC, 12, 138-142.
  • 9. Keuser V, Espejo-Serrano J, Schynts F, et al. (2004): Isolation of caprine herpesvirus type 1 in Spain. Vet Rec, 154, 395-399.
  • 10. Koptopoulos G, Papanastasopoulou M, Papadopoulos O, et al. (1988): The epizootology of caprine herpesvirus (BHV-6) infections in goat populations in Greece. Comp Immunol Microb, 11, 199-205.
  • 11. Kramps JA, Banks M, Beer M, et al. (2004): Evaluation of tests for antibodies against bovine herpesvirus 1 performed in national reference laboratories in Europe. Vet Microbiol, 102, 169-181.
  • 12. Lyaku JR, Nettleton PF, Mardsen H (1992): A comparison of serological relationships among five ruminant alphaherpesviruses by ELISA. Arch Virol, 124, 333-341.
  • 13. Mahmoud MA, Ahmed SA (2009): Prevalence of bovine herpesvirus-1 in sheep and goats in Egypt. Lobal Veterinaria Giza, 3, 472-479.
  • 14. Marinaro M, Bellacicco AL, Tarsitano E, et al. (2010): Detection of CpHV-1 spesific antibodies in goat sera using an ELISA and SN Test. J Vet Diagn Invest, 22, 245-248.
  • 15. Martin WB, Castrucci G, Frigeri F, et al. (1990): A serological comparison of some animal herpesviruses. Comp Immunol Microbiol Infect Dis, 13, 75-84.
  • 16. Nixon P, Edwards S, White H (1988): Serological comparisons of antigenically related herpesviruses in cattle, red deer and goats. Vet Res Commun, 12, 355-362.
  • 17. Ros C, Belak S (2002): Characterization of the glycoprotein B gene from ruminant alphaherpesviruses. Virus Genes, 24, 99-105.
  • 18. Saito JK, Grıbble DH, Berrios PE, et al. (1974): A new herpesvirus isolate from goats: Preliminary report. Am J Vet Res, 35, 847-848.
  • 19. Silva MLCR, Pituco EM, Nogueira AHC, et al. (2013): Serological evidence and risk factors associated cith caprine herpesvirus 1 in dairy goat flocks in a semiarid region of northeastern Brazil. J Vet Diagn Invest, 25, 125.
  • 20. Taylor J. Herbert (1977): Increase in DNA replication sites in cells held at the beginning of S phase. Chromosoma, 62, 291-300.
  • 21. Tempesta M, Cavalli A, Voigt V, et al. (1994): Presenza di anticorpi per caprine herpesvirus 1 (CapHV.1) in allevamenti caprini dell’Italia meridionale. Atti. SIPAOC, 11, 121-122.
  • 22. Thiry J, Keuser V, Muylkens B, et al. (2006a): Ruminant alphaherpesviruses related to bovine herpesvirus 1. Vet Res, 37, 169-190.
  • 23. Thiry J, Tempesta M, Camero M, et al. (2007): Clinical protection against caprine herpesvirus 1 genital infection by intranasal administration of a live attenuated glycoprotein E negative bovine herpesvirus 1 vaccine. BMC Vet Res, 3, 33.
  • 24. Thiry J, Tempesta M, Camero M, et al. (2006b): A live attenuated glycoprotein E negative bovine herpesvirus 1 vaccine induces a partial cross-protection against caprine herpesvirus 1 infection in goats. Vet Microbiol, 113, 303- 308.
  • 25. Thiry J, Saegerman C, Chartier C, et al. (2008): Serological evidence of caprine herpesvirus 1 infection in Mediterranean France. Vet Microbiol, 128, 261-268.
  • 26. Yeşilbağ K, Bilge Dağalp S, Okur Gümüşova S, et al. (2003): Studies on Herpesvirus Infections of Goats in Turkey: Prevalence of Antibodies to Bovine herpesvirus 1. Rev Med Vet, 154, 772-774.
  • 27. Yonguç AD, Akçora A, Vural B (1990): Serological and etiological studies on caprine herpesvirus infection. Project No: Tubitak, VHAG-756.
Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • Yayın Aralığı: 4
  • Başlangıç: 1954
  • Yayıncı: Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Türk veteriner hekimliği öğretiminde ilk kadın akademisyenler

Özgül KÜÇÜKASLAN, Aytaç ÜNSAL, R Tamay BAŞAĞAÇ GÜL

Seçilen keçi sürülerinde gB/gE ELISA kombinasyonu ve VNT kullanılarak BoHV-1 ve CpHV-1 enfeksiyonlarının seroprevalansının araştırılması

Seval BİLGE DAĞALP, Merve ÖZGÜR BAYDIN

Farklı tip et ürünlerinde PZR ile tür tayini

Nüket BİLGEN, Erhan KEYVAN, Bengi ÇINAR KUL, Güzin İPLİKÇİOĞLU ÇİL, Ufuk Tansel ŞİRELİ

Doğu Karadeniz’de yetiştiriciliği yapılan gökkuşağı alabalıkları (Oncorhynchus mykiss)’ndan izole edilen Vibrio anguillarum suşlarının serotiplendirilmesi, genetik karakterizasyonu ve antimikrobiyal duyarlılığının belirlenmesi

Zeynep DENGİZ BALTA, Fikri BALTA

Yumurtacı tavuklarda genişlemiş spektrumlu beta laktamaz üreten dışkı kökenli Escherichia coli izolatlarının karakterizasyonu

Faruk PEHLİVANOĞLU, Dilek ÖZTÜRK, Hülya TÜRÜTOĞLU, Hakan YARDIMCI

Ratlarda etilen glikolün indüklediği nefropatide arı sütünün nefroprotektif ve antioksidatif etkileri

Laçine AKSOY, Zeyneb ASLAN

Bir köpekte tam diz çıkığının transartiküler hibrid eksternal fiksatör ile sağaltımı

Birsen Deniz ÖZBAKIR, Cenk YARDIMCI, Ahmet ÖZAK, Taylan ÖNYAY, Kamil Serdar İNAL

Köpeklerde dirsek displazisinin Uluslararası Dirsek Çalışma Grubu (IEWG) skorlama sistemi ile değerlendirilmesi

Sinan ULUSAN, Hasan BİLGİLİ

Kuzu etlerinden Listeria monocytogenes izolasyonu ve antibiyotik dirençliliklerinin belirlenmesi

Nurcay KOCAMAN, Belgin SARIMEHMETOĞLU

Tavuk eti ve süt ürünleri kaynaklı Enterobacteriaceae suşlarında ESBL- ve AmpC- tipi beta laktamazların fenotipik karakterizasyonu

Burcu ÇAKMAK, Haydar ÖZPINAR, İsmail Hakkı TEKİNER, Birsen SARICI, Fatma GÖKALP, Aylin ÖZADAM