Anaç adayı kiraz ve vişne genotiplerinin doku kültürü yöntemiyle çoğaltılması

Öz 2015-2016 yıllarında yürütülen bu çalışmada, kiraz için anaç adayı olabilecek 3 adet kiraz ve 3 adet vişne genotipi ile Gisela 6 anacının in vitro koşullarda çoğaltılabilme performansının belirlenmesi amacıyla yürütülmüştür. Kiraz ve vişne genotipleri ile Gisela 6 anacını sürgün uçlarından hazırlanan eksplantlar başlangıç aşamasında 0.5 mgl-1 BAP +0.1 mgl-1 GA3 + 0.1 mgl-1 IBA içeren MS besi ortamına dikilerek kültüre alınmıştır. Enfeksiyon oranı kiraz genotiplerinde %12.03-17.87 ve vişne genotiplerinde %22.30-26.23 arasında gerçekleşmiştir. Sürgün çoğaltma aşamasında farklı BAP (0, 0.5 ve 1 mgl-1) dozlarının etkisini belirlemek için çalışma yapılmıştır. BAP dozunun artması ile sürgün sayısının arttığı belirlenirken, en fazla sürgün sayısı 1 mgl-1 BAP dozundan elde edilmiştir. Kiraz genotiplerinde sürgün sayısı 2.14-4.10, vişne genotiplerinde ise 2.73-3.09 adet olarak belirlenmiştir. Köklendirme ortamında ½ MS besi ortamında farklı IBA (0, 0.5, 1, 2 mgl-1) dozlarının köklenme oranına etkisi incelenmiştir. IBA dozunun artması ile köklenme oranının arttığı, kiraz genotiplerinde en yüksek köklenme oranı 2 mgl-1 IBA ve vişne genotiplerinde ise en yüksek köklenme oranı 1 mgl-1 IBA dozundan elde edilmiştir. Kiraz genotiplerinde köklenme oranı %89.44-99.17, vişne genotiplerinde köklenme oranı %76.46- 96.33 olarak tespit edilmiştir.
Anahtar Kelimeler:

Prunus, anaç, In vitro

___

  • Aka Kaçar, Y., A., Yılmaz, M., Mendi, Y., Küden, A., & Çetiner, S. (2001). In vitro besin ortamında kullanılan değişik katılaştırıcı maddelerin ve farklı pH düzeylerinin bazı kiraz (Prunus avium L.) anaçlarının çoğaltılması üzerine etkileri. I. Sert Çekirdekli Meyveler Sempozyumu, 25-28 Eylül, Yalova.
  • Aktürk, Z. (2009). Kirazın (Prunus avium L.) in vitro mikroçoğaltımı. Doktora Tezi, Dicle Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Biyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır.
  • Anonim, (2018). The State of Food and Agriculture 2018. FAO, Roma.
  • Aydın, E. (2019). “Anaç adayı kiraz, vişne ve mahlep genotiplerinin doku kültürü yöntemiyle çoğaltılması”, Doktora Tezi, Ordu Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Bahçe Bitkileri Anabilim Dalı, Ordu.
  • Aydın, E., Varol, İ., Demirsoy, L., Demirsoy, H., & Er, E. (2015). Gisela 5, Gisela 6 ve SL 64 anaçlarının farklı besi ortamlarında çoğaltılması. VII Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, 25-25 Ağustos, Çanakkale.
  • Bilginer, Ş., Ercişli, S., Gerçekcioğlu, R., Eşitgen, A., Güneş, M., Akbulut, M., Koç, A., & Çelik, T.Z. (2009). Orta ve Doğu Karadeniz Bölgesi kiraz vişne anaç ıslahı. TÜBİTAK-TOVAG-106O031 nolu Proje Kesin Raporu, Samsun.
  • Büyükdemirci, H. (2008). The Effects of medium ıngredients on shoot propagation and rooting of cherry rootstocks in vitro. Acta Horticulturae, 795, 419-422.
  • Borkowska, B. (1985). Micropropagation of sour cherry, cultivar Schattenmorelle. Acta Horticulturae, 169, 329-334.
  • Bouzari, N., Mahdavian, M., & Abdollahi, H. (2009). Micropropagation of a dwarfing cherry rootstock. http://www.belsad.by/conference2/files/1/1.pdf (Erişim tarihi: 20.01.2019).
  • Doric, D., Ognjanov, V., Barac, G., Ljubojevic, M., Pranjic, A., Dugalic, K., & Ercişli, S. (2015). Use of in vitro propagation of Oblacinska sour cherry in rootstock breeding. Turkish Journal of Biology, 39(4), 575- 581.
  • Durkoviç, J. (2006). Rapid mikropropagation of mature wild cherry. Biologia Plantarum, 50(4), 733-736.
  • Ercisli, S. (2004). A Sort review of the fruit germplasm resources of Turkey. Genetic Resources and Crop Evolution, 51, 419–435.
  • Fallahpour, M., Miri, S. M., & Bouzari, N. (2015). In vitro propagation of Gisela 5 rootstock as affected by mineral composition of media and plant growth regulators. Journal of Horticultural Research, 23(1), 57-64.
  • Fidancı, A., Burak M., & Erenoğlu, B. (2001). Bazı klonal kiraz ve vişne anaçlarının in vitro’da hızlı çoğaltım tekniklerinin belirlenmesi (I. aşama). I. Sert Çekirdekli Meyveler Sempozyumu, 25-28 Eylül, Yalova.
  • Güçlü, F., Koyuncu, F., & Şan, B. (2010). The in vitro micropropagation of some clonal cherry rootstocks. Journal of Natural and Applied Sciences, 14(2).
  • Hepaksoy, S. (2004). Bazı kiraz anaçlarının mikroçoğaltımı üzerinde araştırmalar I. Gelişme ve çoğalma. Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 41(3), 11-22.
  • Hosseinpour, B., Bouzari, N., Didar, Z., Masoumian, M., Ghaemmaghami, S. A., Ebrahimi, A., & Farvardin, A. (2015). High frequency in vitro propagation of M× M 60, a cherry rootstock: the effects of culture media and growth regulators. Iranian Journal of Genetics and Plant Breeding, 4(2), 28-36.
  • Osterc, G., Luthar Z., & Stampar F. (2004). The importance of the sterilization procedure for producing vigorous cherry plants (Prunus sp.) in vitro. Acta Agriculturae Slovenica, 83(1), 45 – 51.
  • Özçağıran, R., Ünal, A., Özeker, E., & İsfendiyaroğlu, M. (2005). Ilıman iklim meyve türleri sert çekirdekli meyveler cilt 1. Ege Üniversitesi, Ziraat Fakültesi Yayınları, 553, 229.
  • Randhawa, S.S. (1991). Cherries: Temperate Fruits, Ed., Mitra, S.K., Bose, T.K., Rathore, D.S., Horticulture and Allied Publishers, Calcutta, India, 309-343.
  • Rieger, M. (2006). Cherry. Introduction to Fruit Crops. CRC Press, Boca Raton, USA, 520p.
  • Shabani, Z., Moghadam, E. G., Abedi, B., & Tehranifar, A. (2015). The effect of plant growth regulators and their concentration in vitro on mass poropagation of Myrobalan 29C rootstock. Journal of Horticulture and Forestry, 7(3), 57-64.
  • Sharma, V., Thakur, M., & Kumar, A. (2017). An efficient method for in vitro propagation of Gisela 5 (Prunus cerasus x Prunus canescens) - clonal cherry rootstock. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 6(8), 2617-2624.
  • Sülüşoğlu, M. (2002). Kiraz-vişne anaçlarının in vitro çoğaltımı. Doktora Tezi, Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Bahçe Bitkileri Anabilim Dalı, Ankara.
  • Sülüşoğlu, M., & Çelik, M. (2003). SL 64 (P. mahaleb) ve F 12/1 (P. avium) anaçlarının mikro sürgünlerinin köklendirilmesi ve adaptasyonu üzerine araştırmalar. Türkiye IV. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, 08-12 Eylül, Antalya.
  • Yıldırım, H. (2006). Hacıhaliloğlu kayısı (Prunus armeniaca L.) çeşidinin in vitro çoğaltımı. Doktora Tezi, Dicle Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Biyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır.
  • Zainel, A. A., & Hepaksoy, S. (2018). Investigation of the possibilities of propagation a mahaleb rootstock Pontaleb by tissue culture. Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 55(1), 83-88.
Akademik Ziraat Dergisi-Cover
  • ISSN: 2147-6403
  • Yayın Aralığı: 2
  • Başlangıç: 2012
  • Yayıncı: Ordu Üniversitesi Ziraat Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Bazı önemli dış mekan süs bitkilerine ait yeşil çeliklerin köklenme performansları

Güzella YILMAZ, Kenan YILDIZ

Farklı meyve tozları ilave edilen kaşar peynirlerinin renk değerleri ve tekstürel özellikleri üzerine olgunlaşmanın etkilerinin belirlenmesi

Zekai TARAKÇI, Uğur BAYRAM

Çarşamba Ekolojik Koşullarında Yetiştirilen Bazı Standart Elma Çeşitlerinin Verim ve Meyve Özellikleri

Mehmet Fikret BALTA, Barış AKSOY, Orhan KARAKAYA, Serkan UZUN

Karayemişte Siyanür İçerikli Amigdalin ve Prunasin Miktarlarının Belirlenmesi

Sevda DURSUN, Ali İSLAM

Anaç adayı kiraz ve vişne genotiplerinin doku kültürü yöntemiyle çoğaltılması

Erol AYDIN, Tarık YARILGAÇ

Konya koşullarında bazı kuru fasulye genotiplerinin kalite özelliklerinin belirlenmesi

Seydi AYDOĞAN, Mehmet ŞAHİN, Aysun GÖÇMEN AKÇACIK, Sümeyra HAMZAOĞLU, Berat DEMİR, Çiğdem MECİTOĞLU GÜÇBİLMEZ, Sadi GÜR, Ramazan KELEŞ

Orman ve mera alanlarında oluşan toprakların sınıflandırılması: Kabadüz/Ordu

Ferhat TÜRKMEN, Soner ŞENYURT

Cost benefit analysis of soil conservation practices: Evidence from Nigeria

Theophilus Miebi GBIGBI

Muş İli Merkez İlçesi Sığırcılık İşletmelerinde İneklerin ve Buzağıların Beslenmesi Açısından Mevcut Durum ve Çözüm Önerileri

Özer KURT, Onur ŞAHİN, Önder Bayram ÇOBAN

Toprak koruma uygulamalarının maliyet fayda analizi: Nijerya için bir vaka çalışması

Theophilus Miebi GBİGBİ