Maraşotu Nicotiana rustica L. kullanımının lenfosit alt gruplarına etkilerinin araştırılması

Amaç: Bu çalışmada; maraşotu kulanımının lenfosit alt gruplarına olan etkilerinin ortaya konması amaçlanmıştır.Yöntem: Bu çalışmada, sigarayı bırakmak için maraşotu kullanmaya başlayan ve bu otun bağımlısı olan sağlıklı gönüllüler olgu grubu ve sağlıklı, herhangi bir tütün ürünü kullanmayan gönüllüler kontrol grubu oluşturulmuştur. Gönüllülerden bir defa alınan tam kan örneklerinde hücresel immün sisteme ait lenfosit alt grupları kitler Becton Dickinson kullanılarak akım sitometrik yöntemle değerlendirilmiştir. Bulgular: Olgu ve kontrol gruplarındaki tüm denekler erkek olup yaş ortalamaları açısından gruplar birbirine benzer oluşturulmuştur. Olgu grubunun CD4+/CD8+ T hücre oranları, CD19+ B lenfosit ve CD4+ T helper lenfosit hücre yüzdeleri ortalamaları kontrol grubuna göre anlamlı olarak düşük bulunmuştur. Bununla birlikte, olgu grubunun CD16+56+ natural killer lenfosit ve CD8+ T sitotoksik lenfosit hücre yüzdeleri ortalamaları kontrol grubundan anlamlı olarak yüksek belirlenmiştir. CD3+ total T lenfosit hücre yüzdeleri ortalamaları ise her iki grupta da benzer olarak saptanmıştır. Sonuç: Maraşotu kullanımının tiryakilerde hücresel immüniteyi göreceli olarak arttırdığı, humoral immüniteyi ise azalttığı düşünülmektedir. Neticede her türlü sapma ile sonuçlanan immün yanıtlar, çeşitli hastalıklara zemin hazırlayabilmektedir. Bu nedenle, sigara konusunda olduğu gibi, maraşotunun kullanıcılarının da sağlığa olabilecek etkiler konusunda uyarılması önem taşımaktadır

Anahtar Kelimeler:

Maraşotu, dumansız tütün, lenfosit alt grupları, immün sistem, Nicotiana rustica L

Investigation of the effects of lymphocyte sub-groups of the use of Maraş powder Nicotiana rustica L.

Objective: This study was to investigate the effects of lymphocyte sub-groups of the use of Maraş powder. Method: This study used healthy volunteers, and no smoking or Maras powder control group used healthy volunteers. The blood samples for lymphocyte subsets of the cellular immune system lymphocyte subsets of antibodies were evaluated with Becton Dickinson kits using a flow-cytometrik method. Results: Case group averages of CD4+ /CD8+ T cell ratios, CD19+ B lymphocytes and the mean percentage of CD4+ T lymphocytes were significantly lower than the control group p

Keywords:

Maras powder, smokeless tobacco, lymphocyte subsets, immune system, Nicotiana rustica L,

PDF

___

Erenmemişoğlu A, Tekol Y, Kartal M, Kurucu S. The use of a smokeless tobacco in our country “maraşotu” Second International Symposium of Pharmaceutical Sciences. Ankara-Turkey, June, 11- , 1991.
Idris AM, Ibrahim YE, Warnakulasuriya KA, Cooper DJ, Johnson NW, Nilsen R. Toombak use and cigarette smoking in the Sudan: estimates of prevalence in the Nile state. Prev Med, 1998; (4): 597-603.
Ibrahim SO, Vasstrand EN, Johannessen AC, Idris AM, Magnusson B, Nilsen R, et al. Mutations of the p53 gene in oral squamous-cell carcinomas from Sudanese dippers of nitrosamine-rich toombak and non-snuff-dippers from the Sudan and Scandinavia. Int J Cancer, 1999; 81(4): 527-34.
Sopori LM, Kozak W. Immunomodulatory effects of cigarette smoke. J Neuroimmunol, 1998; 83, 56.
Ozkul Y, Erenmemisoglu A, Cucer N, Menevse A, Saatci CA. Sister-chromatid exchange inducing effect of smokeless tobacco using on T-lymphocyte chromosomes. Mutat Res, 1995; 334(2): 209-12.
Erenmemisoglu A, Ustun H, Kartal M. Carcinoma of buccal mucosa in smokeless tobacco users: a preliminary study of the use of cytology for early detection. Cytopathol, 1995; 6(6): 403-8.
Idris AM, Ibrahim SO, Vasstrand EN, Johannessen AC, Lillehaug JR, Magnusson B, et al. The Swedish snus and the Sudanese toombak: are they different? Oral Oncol, 1998; 34(6): 558-66.
Holt PG. Immune and inflammatory function in cigarette smokers. Thorax, 1987; 42: 241-9. Gulsvik A, Fagerhol MK. Smoking and immunoglobulin levels. Lancet, 1979; 1: 449.
Tollerud DJ, Clark YW, Brown LM, Nevla’nd CY, Mann DL, Pankiw-Trost LK, et al. Association of cigarette smoking with decreased numbers of circulating natural killer cells. Am Rev Respir Dis, ; 139(1):194-8.
Tollerud DJ, Clark JW, Brawn LM, Neuland CY, Mann DL, Pankiw-Trast LK, et al. The effects of cigarette smoking on T-cell subsets. a population-based survey of healthy caucasians. Am Rev Respir Dis, ; 139(6): 1446-51.
Buckley CE, Darsey FC. Serum immunoglobulin levels throughout the life span of healthy man. Ann Intern Med, 1971; 75: 673-82.
Tollerud DJ, Clark JW, Brown LM, Neuland CY, Pankiw-Trast LK, Blattner WA, et al. The influence of age, race, and gender on peripheral blood mononuclear cell subsets in healthy nonsmokers. J Clin Immunol, 1989; 9(3): 214-22.
Goud SN, Zhang L, Kaplan AM. Immunostimulatory potential of smokeless tobacco extract in in vitro cultures of murine lymphoid tissues. Immunopharmacol, 1993; 25(2): 95-105.
Lindemann RA, Park NH. Inhibition of human lymphokine-activated killer activity by smokeless tobacco(snuff) extract. Arch Oral Biol, 1988; 33(5): 21.
Kılıçturgay K. İmmünoloji. 3.Baskı, İstanbul; Güneş Nobel Kitabevi, 2003; 15-51.
Belkastro AN, Arthur GD, Albisser RA, Raj DA. Heart, liver, and skeletal muscle myeloperoxidase activity during exercise. J Appl Physiol, 1996; 80: –5.
Fry RW, Morton AR, Keast D. Biological responses to overload trainin in endurance sports. Eur J Appl Physiol, 1992; 64: 335–44.
Larramendy LM, Knuutila S. Increased frequency of micronuclei in B and T8 lymphocytes from smokers. Mutat Res, 1991; 259: 189-95.
Moszczynski P, Zabinski Z, Moszczynski P Jr, et al. Immunological findings in cigarette smokers. Toxicol Lett, 2001; 118(3): 121-7.
Tollerud DJ, Clark JW, Brawn LM, Neuland CY, Mann DL, Pankiw-Trast LK, et al. T cell subsets in healthy black smokers and nonsmokers. Evidence for ethnic group as an important respanse modifier. Am Rev Respir Dis, 1991; 144: 612-6.