Işık Mikroskobik Bir Çalışma: Devede Konjunktiva ile İlişkili Lenfoid Doku

Konjunktiva ile iliĢkili lenfoid doku (CALT), gözün en önemli aksesuar bileĢenlerinden biridir. Bu çalıĢma, sağlıklı develerde konjunktiva ile iliĢkili lenfoid dokunun histolojik dağılımını ve karakteristik özelliklerini ıĢık mikroskobu tekniğiyle ortaya koymak amacıyla yapıldı. ÇalıĢmada toplam 5 adet (13-19 yaĢ aralığında) deveye ait alt ve üst göz kapağı kullanıldı. CALT’a ait genel makroskobik görünüm asetik asit uygulamasıyla ortaya konuldu. Tüm develerde CALT’ın en önemli elemanları olan ve soliter ve agregat lenf foliküllerinin varlığı tespit edildi. Foliküllerin üzerlerinin folikülle iliĢkili epitel (FAE) olarak bilinen ve intra epiteliyal lenfositleri barındıran, kadeh hücrelerinin görülmediği ince, yassılaĢmıĢ epitel ile örtülü olduğu görüldü. Buna ek olarak, lenf foliküllerinin germinal merkez, korona, dom bölgesi ve inter foliküler alanlardan meydana geldiği fark edildi. Ġnterfoliküler alanlarda CALT en önemli karakteristik özelliklerinden bir olan, yüksek endotelli venüllerin varlığı ortaya konuldu. Sonuç olarak, deve CALT’ının sahip olduğu belirleyici özellikleriyle diğer mukozal lenfoid dokularla oldukça yüksek benzelikler göterdiği ve oküler savunma mekanizması içerisinde önemli bir rol oynadığı kanısına varıldı.
Anahtar Kelimeler:

CALT, Deve, FAE, lef folikülü, MALT

A Light Microscopic Study: Conjunctiva-Associated Lymphoid Tissue in Camel

Conjunctiva-associated lymphoid tissue (CALT) is one of the most important accessory component of the eye. This study was undertaken to demostrate the histological distribution and characteristic features of CALT in healhty camels using light microscopy technique. A total upper and lower eyelids of 5 (age range, 13-19) camels were investigated. The gross appearance of CALT were revealed by acetic acid application. Fully intact solitary and aggregated lymphoid follicles were observed as members of CALT in all camels. These follicles were covered by a thin, flattened epitehelium called follicular-associated epithelium (FAE) that contained intra epithelial lymphocytes and lacked goblet cells. In addition germinal centers, corona, subepithelial dome region and interfolliculer areas were noticed within the lymphoid follicles. The presence of high endothelial venules (HEV), a highly distinctive feature of CALT, was confirmed in interfollicular areas. We conclude that CALT of camel closely resembles other mucosal lymphoid tissues and may serve as an important member of ocular defense mechanism with its determinative features.

___

  • Agnifili L, Mastropasqua R, Fasanella V, Di Staso S, Mastropasqua, A, Brescia L, Mastropasqua, L. In vivo confocal microscopy of conjunctiva-associated lymphoid tissue in healthy humans ın vivo confocal microscopy of CALT. Invest Ophth Vis Sci. 2014; 55(8): 5254-5262.
  • Ambroziak AM, Szaflik J, Szaflik JP, Ambroziak M, Witkiewicz J, Skopiński P. Immunomodulation on the ocular surface: a review. Cent Eur J Immunol. 2016; 41(2): 195-208.
  • Anderson ND, Anderson AO, Wyllie RG. Specialized structure and metabolic activities of high endothelial venules in rat lymphatic tissues. Immunol. 1976; 31:455-473.
  • Aştı RN, Kurtdede N, Altunay H, Özen A. Electron microscopic studies on conjunctiva associated lymphoid tissue(CALT) in Angora goats. Dtsc Tierarztl Wschr. 2000a; 107: 196-198.
  • Aştı RN, Kurtdede N, Altunay H, Özen A. Light microscopic studies on the conjunctiva associated lymphoid tissue (CALT) of Angora goats. AÜ Vet Fak Derg. 2000b; 47: 31-37.
  • Bayraktaroğlu AG, Aştı RN. Light and electron microscopic studies on conjunctiva associated lymphoid tissue (CALT) in cattle. Revue Med Vet. 2009; 160(5): 252-257.
  • Bayraktaroğlu A, Ergün E, Beyaz F, Ertuğrul T. Ankara tavĢanında konjunktiva ile iliĢkili lenfoid doku. Erciyes Üniv Vet Fak Derg. 2010; 7(1): 21-27.
  • Bayraktaroğlu AG, Korkmaz D, Aştı RN, Kurtdede N, Altunay H. Conjunctiva associated lymphoid tissue in the ostrich (Struthio camelus). Kafkas Univ Vet Fak Derg. 2011; 17(1): 89-94.
  • Beyaz F. M cells: membranous epithelial cells. Erciyes Univ Vet Fak Derg. 2004; 1: 133-138.
  • Cain C, Phillips TE. Developmental changes in conjunctiva-associated lymphoid tissue of the rabbit. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008; 49(2): 644-649.
  • Chodosh J, Kennedy RC. The conjunctival lymphoid follicles in mucosal immunology. DNA Cell Biol. 2002; 21: 421-433.
  • Chodosh J, Nordquist RE, Kennedy RC. Comparative anatomy of mammalian conjunctival lymphoid tissue: a putative mucosal immune site. Dev Comp Immunol. 1998; 22: 621-630.
  • Crossmon G. A modification of Mallory’s connective tissue stain with a discussion of the principles involved. Anat. Rec. 1937; 241: 155.
  • Fahmy LS, Hegazy, AA, Abdelhamid MA, Hatem ME, Shamaa AA. Studies on eye affections among camels in Egypt: clinical and bacteriological studies. Scientific Journal of King Faisal University (Basic and Applied Sciences). 2003; 4(2): 14-24.
  • Fix AS, Arp LH. Morphologic characterization of conjunctiva-associated lymphoid tissue in chickens. Am J Vet Res. 1991; 52: 1852-1859.
  • Girard JP, Springer TA. High endothelial venules (HEVs): specialized endothelium for lymphocyte migration. Immunol Today. 1995; 16 (9): 449–457.
  • Guiliano EA, Moore CP, Phillips TE. Morphological evidence of M cells in healthy canine conjunctiva-associated lymphoid tissue. Greafes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2002; 240: 220-226.
  • Hannant D. Mucosal immunology: overview and potential in the veterinary species. Vet Immunol Immunopathol. 2002; 87: 265-267.
  • Kessing SV. Mucous gland system of the conjunctiva. A quantitative normal anatomical study. Acta Ophthalmol Suppl. 1967; 95: 91.
  • Klećkowska‐Nawrot JE, Goździewska‐Harłajczuk K, Łupicki D, Marycz K, Nawara T, Barszcz K, Łukaszewicz E. The differences in the eyelids microstructure and the conjunctiva‐associated lymphoid tissue between selected ornamental and wild birds as a result of adaptation to their habitat. Acta Zool. 2017; 00: 1-28.
  • Knop E, Knop N. Conjunctiva-associated lymphoid tissue in the human eye. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000; 41: 1270-1279.
  • Knop E, Knop N. A functional unit for ocular surface immune defense formed by the lacrimal gland, conjunctiva and lacrimal drainage system. Adv Exp Med Biol. 2002; 506: 835-844.
  • Knop E, Knop N. The role of eye-associated lymphoid tissue in corneal immune protection. J Anat. 2005a; 206: 271-285.
  • Knop E, Knop N. Influence of the eye-associated lymphoid tissue (EALT) on inflammatory ocular surface disease. Ocul Surf. 2005b; 3:180-187.
  • Liebler-Tenorio E, Pabst R. MALT structure and function in farm animals. Vet Res. 2006; 37: 257-280.
  • Neutra MR, Pringault E, Kraehenbuhl JP. Antigen sampling across epithelial barriers and induction of mucosal immune responses. Annu Rev Immunol. 1996; 14: 275-300.
  • Ruskell GL. Organization and cytology of lymphoid in the cynomolgus monkey conjunctiva. Anat Rec. 1995; 243: 153-164.
  • Russell MW, Martin MH, Wu H, Hollingshead SK, Moldoveanu Z, Mestecky J. Strategies immunization againts mucosal infections. Vaccines. 2000; 19: 122-127.
  • Sakimoto T, Shoji J, Inada N, Saito K, Iwasaki Y, Sawa M. Histological study of conjunctiva-associated lymphoid tissue in mouse. Japanese J Ophthalmol. 2002; 46: 364-369.
  • Sandıkçı M, Eren Ü, Kum S. Alphanaphthyl acetate esterase activity in the spleen, lymph nodes and conjunctivaassociated lymphoid tissues of camels (Camelus dro-medarius). Revue Med Vet. 2005; 156: 99-103.
  • Siebelmann S, Gehlsen U, Hüttmann G, Koop N, Bölke T, Gebert A, Steven P. Development, alteration and real time dynamics of conjunctiva-associated lymphoid tissue. PloS one. 2013; 8(12):1-13.
  • Steven P, Gebert A. Conjunctiva-associated lymphoid tissue – current knowledge, animal models and experimental prospects. Ophthalmic Res. 2009; 42: 2-8.
  • Zhang XF, Li SX, Li H, Dou SY, Zhang WD, Jia S, Wang WH. IgA and IgG secreting cells in CALT of Bactrian camel. Chinese Journal of Veterinary Science. 2016; 2: 1-32.
  • Zhivov A, Stachs O, Kraak R, Stave J, Guthoff RF. In vivo confocal microscopy of the ocular surface. Ocul Surf. 2006; 4: 81-93.
Kocatepe Veteriner Dergisi-Cover
  • ISSN: 1308-1594
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 2008
  • Yayıncı: Afyon Kocatepe Üniversitesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Afrika Gri Papağanlarına (Psittacus erithacus) Ait Dökülmüş Tüy Örneklerinin İki Yöntem ile DNA Kaynağı Olarak CHDW ve CHDZ Genlerinin Moleküler Analizi ile Cinsiyet Tanımlamasında Kullanımının Araştırılması

Kozet AVANUS, Lora KOENHEMSI

Atak-S ve Isa Brown Tavukları Arasındaki Genetik Çeşitliliğin SSR Belirteçleri ile Tahmini

Selçuk ÖZDEMİR, Harun ARSLAN, Uğur ÖZENTÜRK, Fatih YILDIRIM, Ahmet YILDIZ

Türkiye’de Canlı Sığır ve Sığır Eti İthalatındaki Gelişmeler ve Üretici Fiyatlarının Trend Modelleri ile İncelenmesi

Hasan ÇİÇEK, İlkay DOĞAN

Geleneksel Türk Süt Ürünü Kaymaktan Escherichia coli O157'nin İlk Bildirimi

Didem SAĞLAM, Esra ŞEKER

Canine Visceral Leishmaniasis’in Farklı Evrelerinde Ekokardiyografik Ejeksiyon Fraksiyonu ve Fraksiyonel Kısalmanın Değerlendirilmesi

Canberk BALIKCI, Kerem URAL

Koçlarda Bazı Androlojikal Parametrelerin ve Biyokimyasal Özelliklerin Mevsimle İlişkisi

Deniz YENİ, Mustafa GÜNDOĞAN

Köpeklerde Dış Kulak Yolu Hastalıklarının Video-Otoskopik, Ultrasonografik ve Radyografik Yöntemlerle Belirlenmesi

Nusret APAYDIN, Özge HASANDAYIOĞLU

Granzimlerin Apoptotik ve Non-Apoptotik Etkileri

Ercan KESKİN, Durmuş HATİPOĞLU

İnfeksiyonların Tanısında En Çok Kullanılan İzotermal Amplifikasyon Yöntemleri

Mehmet ÜVEY, Nilgün ÜNAL

Neonatal İshalli Buzağılarda İki Farklı Hematokrit Ölçüm Tekniğinin Karşılaştırılması

Hasan ERDOĞAN, Mehmet GÜLTEKİN, Serdar PAŞA, Kerem URAL