Mustafa Sencer Karagül, Mehmet Engin Malal, Ayşe Ateşoğlu, Kadir Akar

TÜRKİYE’DE SIĞIRLARDA Q ATEŞİ SEROPREVALANSININ ARAŞTIRILMASI

Amaç: Bu çalışmanın amacı Türkiye’de sığırlarda Q ateşi seroprevalansının araştırılmasıdır. Q ateşi, Coxiella burnetii bakterisinin neden olduğu birçok ülkede görülen oldukça bulaşıcı zoonoz bir hastalıktır. Birden fazla türü etkileyen bir hastalık olduğundan birçok evcil ve vahşi hayvan patojenin taşıyıcısı olabilmektedir. Fakat sığır, koyun ve keçiler başlıca rezervuarlardır ve hastalık genellikle yavru atma ve ölü doğum vakalarının artışı ile kendini göstermektedir. Yöntem: Yüksek sensitivitesi ve kullanım kolaylığından ötürü ELISA testleri tercih edilmekte ve Q ateşi hastalığının serolojik teşhisinde önerilmektedir. Çalışma kapsamında 2017-2018 yıllarında 22 ilden rastlantısal olarak toplanan 1114 sığır kan serumu ELISA testi ile analiz edilmiştir. Bulgular: Analiz edilen numuneler arasında %18,04 seropozitiflik tespit edilmiştir. İl düzeyindeki sonuçlar %2,3-%35,2 aralığında dağılım göstermektedir. Bölgesel sonuçlar ise birbirine daha yakın olup %15,1-%22,3 arasında değişmektedir. Sonuç: Elde edilen seroprevalans sonuçları, Türkiye’nin farklı bölgelerindeki sığırların Q ateşi hastalığının etkeni olan C. burnetii ile karşı karşıya kaldığını göstermektedir. Gerek halk sağlığı gerekse de hayvan sağlığı açısından tehlike oluşturan hastalığa karşı oluşturulacak mücadele stratejilerinin gerekliliği çalışma sonuçları ile desteklenmektedir. Çalışmada ulaşılan sonuçlar, yönlendirici ve kıyaslanabilir veriler paylaşarak hastalık ile mücadeleye katkı sunmaktadır.

INVESTIGATION OF Q FEVER SEROPREVALENCE IN CATTLE IN TURKEY

Objective: The aim of this study is to investigate Q fever seroprevalence in cattle in Turkey. Q fever is a highly infectious zoonotic disease which iscaused by Coxiella burnetii and which has occurrence in many countries of the world. As it is a multiple species disease, many different domesticand wild animals could be the carrier of the pathogen. However, cattle, sheep and goats are the main reservoirs and the disease generally appearswith an increase in the cases of abortion and stillbirth.Methods: Enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) is preferred and recommended for the diagnosis of Q fever because they are highlysensitive and easy to use. In this study, blood samples of cattle randomly collected from 22 provinces of Turkey between 2017-2018 were tested byELISA.Results: Among 1114 blood samples analyzed, the detected seropositivity level is 18% and provincial seropositivity is between 2.3%-35.2%.Regional results are close to each other changing between 15.1% and 22.3%.Conclusion: The results gathered have revealed the C. burnetii exposure of cattle in different regions of Turkey.The findings of this study displaythe necessity of strategies against this disease which poses hazards for both public and animal health. Since this disease leads to serious loss inanimal production, determination of the fighting strategies against Q fever and evaluation of the methods after practice is important. This study isbelieved to contribute to the fight against this disease with the leading and comparable data it presents.

PDF

___

1. Maurin M, Raoult D. Q fever. Clin Microbiol Rev . 1999;12:518–553.
2. European Food Safety Authority-EFSA. Scientific Opinion on Q fever, EFSA Panel on Animal Health and Welfare (AHAW), EFSA Panel on Biological Hazards (BIOHAZ) EFSA Journal. 2010;8(5):1595.
3. World Organisation for Animal Health (OIE). Terrestrial Manual, Chapter 3.1.16. Q fever.Paris, France: World Organisation for Animal Health: 2019.
4. Mcquiston J, Childs J, Thompson H. Q fever. J Am Vet Med Assoc. 2002;221:796-799. doi: 10.2460/javma.2002.221.796
5. Madariaga MG, Rezai K, Trenholme GM, Weinstein RA. Q fever: a biological weapon in your backyard. Lancet Infect Dis. 2003;3(11):709-721. doi: 10.1016/s1473-3099(03)00804- 1.
6. Eldin C, Mélenotte C, Mediannikov O, et al. From Q Fever to Coxiella burnetii Infection: a Paradigm Change. ClinMicrobiol Rev. 2017;30(1):115-190. doi: 10.1128/CMR.00045-16.
7. Arricau-Bouvery N, Rodolakis A. Is Q fever an emerging or re-emerging zoonosis? Vet Res. 2005;36(3):327-349. doi: 10.1051/vetres:2005010. PMID: 15845229.
8. Cutler SJ, Bouzid M, Cutler RR. Q fever. J Infect. 2007;54(4):313-318. doi: 10.1016/j.jinf.2006.10.048.
9. Nusinovici S, Frössling J, Widgren S, Beaudeau F, Lindberg A. Q fever infection in dairy cattle herds: increased risk with high wind speed and low precipitation. Epidemiol Infect. 2015;143(15):3316-3326. doi: 10.1017/S0950268814003926.
10. Rodolakis A. Q fever in dairy animals. Ann N Y Acad Sci. 2009 May;1166:90-93. doi: 10.1111/j.1749- 6632.2009.04511.x.
11. Plummer PJ, McClure JT, Menzies P, Morley PS, Van den Brom R, Van Metre DC. Management of Coxiella burnetii infection in livestock populations and the associated zoonotic risk: A consensus statement. J Vet Intern Med. 2018;32(5):1481-1494. doi: 10.1111/jvim.15229.
12. Hartzell JD, Wood-Morris RN, Martinez LJ, Trotta RF. Q fever: epidemiology, diagnosis, and treatment. Mayo Clin Proc. 2008;83(5):574-579. doi: 10.4065/83.5.574.
13. Boroduske A, Trofimova J, Kibilds J, Papule U, Sergejeva M, Rodze I, Grantina-Ievina L. Coxiella burnetii (Q fever) infection in dairy cattle and associated risk factors in Latvia. Epidemiol Infect. 2017;145(10):2011-2019. doi: 10.1017/S0950268817000838.
14. Guatteo R, Beaudeau F, Berri M, Rodolakis A, Joly A, Seegers H. Shedding routes of Coxiella burnetii in dairy cows: implications for detection and control. Vet Res. 2006;37(6):827-833. doi: 10.1051/vetres:2006038.
15. Still Brooks KM, Stensland WR, Harmon KM, O'Connor AM, Plummer PJ. Risk of exposure to Coxiella burnetii from ruminant livestock exhibited at Iowa agricultural fairs. Zoonoses Public Health. 2018;65(3):334-338. doi: 10.1111/zph.12439.
16. Payzın S, Golem SB. Türkiye’de Q humması. Türk İji Tec Biyol Derg 1948;8;(1):94-116.
17. Cetinkaya B, Kalender H, Ertas BH, et al. Seroprevalence of coxiellosis in cattle, sheep and people in the east of Turkey. Vet Rec. 2000;146:131–136.
18. Seyitoğlu, S, Özkurt, Z, Dinler, U, Okumuş, B. The seroprevalence of Coxiellosis in farmers and cattle in Erzurum district in Turkey.Turk J Vet Anim Sci. 2006;30:71-75.
19. Ceylan E, Berktas M., Keles I., Agaoglu Z. Seroprevalence of Q fever in cattle and sheep in the east of Turkey. Asian J Anim Vet Adv. 2009;4:114–121.
20. Gazyagci S, Aktas MS, Kilic S, Babur C, Çelebi B, Duru SY. Seroprevalence of Q fever in dairy cattle in the Konya province, Turkey. Rev Med Vet 2011;162:387-390.
21. Arserim N, Yeşilmen S, Tel O, et al. Seroprevalance of Coxiellosis in cows, sheep, goats and humans in Diyarbakir region of Turkey. Afr J Microbiol Res. 2011;5(15):2041-2041. doi: 10.5897/AJMR11.061.
22. Parin U, Kaya O. Detection of Coxiella burnetii prevalence in bovine, ovine, and caprine herds. Ankara Univ Vet FakDerg. 2015;62:177-181.
23. Saglam AG, Sahin M. (2016). Coxiella burnetii in samples from cattle herds and sheep flocks in the Kars region of Turkey. VetMed. 61. 17-22. 10.17221/8678-VETMED.
24. European Centre for Disease Prevention and Control-ECDC. Panel with Representatives from the Netherlands, France, Germany, United Kingdom, United States of America.Risk assessment on Q fever. ECDC Technical Report. Stockholm, Sweden: ECDC 2010. doi:10.2900/28860.
25. Kilic A, Kalender H.A study of the correlation between Coxiella burnetii seropositivity and abortions in sheep in Eastern and Southeastern Turkey. Indian J Anim Res. 2016;50:401–405.
26. Karagul MS, Malal ME, Akar K. Seroprevalence of Q Fever in Sheep and Goats from the Marmara Region, Turkey. J Vet Res. 2019;19;63(4):527-532. doi: 10.2478/jvetres-2019-0070.
27. Karagul MS, Malal ME, Akar K. Investigation of Coxiella burnetii and Chlamydia abortus Antibodies in Sheep in Düzce Region. J DU Health Sci Inst. 2019;9(3):106-109.
28. Gozalan A, Rolain JM, Ertek M, et al. Seroprevalence of Q fever in a district located in the west Black Sea region of Turkey. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2010;29(4):465-469. doi: 10.1007/s10096-010-0885-3.