Fındık (Corylus avellana L.) Yeşil Kabuk ve Yaprak Ekstraklarında Biyolojik Aktivite Tayini

Türkiye’de özellikle Karadeniz bölgesinde yetişen Corylus avellana L. (C. avellana L.) türü fındıktan yılda 10,000 tondan daha fazla fındık yaprağı ve 300 bin tondan fazla da yeşil kabuk artığı açığa çıkmaktadır. Bu nedenle bu çalışmamızda fındık yeşil yaprak ve kabuğunun biyolojik aktivitelerini belirlemek istedik. Bu çalışmada, fındık yeşil kabuğu ve yaprağı metanol ile oda sıcaklığında uygun optimizasyon koşullarında 72 saat muamele edilerek ektraktları elde edilmiştir. Elde edilen ekstraklardan antibakteriyal aktivite testleri 8 farklı standart bakteri suşu kullanılarak agar kuyu difüzyon yöntemi kullanılarak analiz edilmiştir. Ekstraklarda antiradikalik aktivite tayini için DPPH (1,1-difenil-2-pikrilhidrazil) yöntemi kullanılmıştır. Bu çalışmada ekstrakların H2O2 ve UV-C’ye maruz bırakılarak oluşan DNA hasarı üzerine etkileri pBR322 plazmid DNA kullanılarak araştırılmıştır. Çalışmanın sonucunda fındık yeşil yaprak ve kabuklarının antiradikalik aktivite gösterdikleri tespit edilmiş olup ayrıca bu ekstrakların birçok bakteriye karşı antibakteriyel özellik gösterdikleri de bulunmuştur. Fındığın yeşil kabuk ekstaksiyonunun DNA üzerine UV-C ve H2O2 ‘in etkilerine karşı koruyucu potansiyeli olduğu fakat yeşil yaprağın DNA koruyucu etki göstermediği tespit edilmiştir. 

___

  • Alasalvar, C., Shahidi, F., Liyana-Pathirana, C., Ohshima, T. 2003. Turkish Tombul hazelnut (Corylus avellana L.). 1. Composition characteristics. J. Agric. Food Chem, 51 : 3790–3796.
  • Bowerman, B. 2005. Oxidativestressandcancer: a catenin convergence. Science, 308 (5725) : 1119–1120.
  • Blois, M.S. 1958. Antioxidant Determinations by the Use of a Stable Free Radical. Nature, 181 : 1199-1200.
  • Chung K.T, Thomasson W.R, Wu-Yuan CD. 1990. Growth inhibition of selected food-borne bacteria, particularly Listeria monocytogenes, by plant extracts. Journal of Applied Bacteriology, 69:498-503.
  • Fukuda, T., Ito, H., Yoshida, T. 2003. Antioxidant polyphenols from walnuts (Juglans regia L.). Phytochemistry, 63, 795–80.
  • Erik, S., Tarıkahya, B. 2004. Türkiye Florası Üzerine. Kebikeç, 17:139-163.
  • Goodman, J., Walsh, V. 2001. The Story of Taxol: Nature and Politics in the Pursuit of an Anti-Cancer Drug. Cambridge University Press. 17
  • Halliwell, B. 1994. Free radicals, antioxidants and human disease: curiosity, cause or consequence? Lancet, 344:721-724.
  • Holton, R.A., Somoza, C, Kim, H., Liang, F., Biediger, J., Boatman, P..D., Shindo, Jeong, J.B., Seo, E.W., Jeong, H.J. 2009. Effect of extracts from pine needle agains toxidative DNAdamage anda poptosisinduced by hydroxyl radical via anti oxidant activity. Food and Chemical Toxicology, 47 (8) : 2135–2141.
  • Oliveira, I., Sousa, A., Valentão, P., Andrade, P. B., Ferreira, I. C., Ferreres, F., ... Pereira, J. A. 2007. Hazel (Corylus avellana L.) leaves as source of antimicrobial and antioxidative compounds. Food chemistry, 105(3) : 1018-1025.
  • Pereira, J.A., Oliveira, I., Sousa, A., I., Ferreira, C.F.R., Federico, F., Bento, A., Seabra, R., Bento, Albino., Estevinho, Letı´cia. 2008. Bioactive properties and chemical composition of six walnut (Juglans regia L.) cultivars. Food and Chemical Toxicology, 46: 2103–2111.
  • Ke, Y., Duan, X., Wen, F., Xu, X., Tao, G., Zhou, L., Zhang, R., Qiu, B. 2010. Association of melamine exposure with urinary stone andoxidative DNA damage in infants, Archives of Toxicology, 84(4): 301–307.
  • Khanand, N., Sultana, S. 2005. Inhibition of potassium bromate in duced renaloxidative stressand hyper proli ferative responseby Nymphaeaalbain Wistarrats. Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 20(3): 275-283.
  • Kendir, G., Güvenç, A. 2010. Etnobotanik ve Türkiye’de Yapılmış Etnobotanik Çalışmalara Genel Bir Bakış. Hacettepe Ün. Eczacılık Fak. Dergisi, 30(1): 49-80.
  • Larson, R. A. 1988. The antioxidants of higher plants. Phytochemistry, 27: 969–978.
  • Nicolaou, K.C., Yang, Z., Liu, J.J., Ueno, H., Nantermet, P.G., Guy, R.K., Claiborne, C.F., Renaud, J., Couladouros, E.A., Paulvannan, K.,Sorensen, E.J. 1994. Total Synthesis of Taxol. Nature, 367: 630-634.
  • Russo, A, Acquaviva R, Campisi A, Sorrenti, V, DiGiacomo, C, Virgata, G, Barcellona, ML, Vanella, A. 2000. Bioflavonoids as antiradicals, antioxidantsand DNA cleavage protectors. Cell. Biol. Toxicol, 16: 91-98.
  • Seabra, R.M., Andrade, P.B., Valenta˜o, P., Fernandes, E., Carvalho, F., Bastos, M.L. 2006. Anti-oxidant compounds extracted from several plant materials. In: Fingerman, M., Nagabhushanam, R. (Eds.), Biomaterials from Aquatic and Terrestrial Organisms. Science Publishers, Enfield (New Hampshire). 115–174.
  • Singh B.N, Singh B.R, Singh R.L, Prakash D, Dhakarey R, Upadhyay G, Singh H.B. 2009. Oxidative DNA damage protective activity, anti oxidant and anti-quorum sensing potentials of Moringaoleifera. Food and Chemical Toxicology, 47(6): 1109–1116.
  • Shahidi, F., Alasalvar, C., Liyana-Pathirana, C. 2007. Antioxidant phytochemicals in hazelnut kernel (Corylus avellana L.) and hazelnut by products. J. Agric. Food Chem, 55: 1212–1220.
  • Sousa, A., Ferreira, I.C.F.R., Calhelha, R., Andrade, P.B., Valenta˜o, P.,Seabra, R., Estevinho, L., Bento, A., Pereira, J.A. 2006. Phenolics and antimicrobial activity of traditional stoned table olives ‘‘alcaparra”. Bioorg. Med. Chem, 14: 8533–8538.
  • Rauha, J. P., Remes, S., Heinonen, M., Hopia, A., Ka¨hko¨nen, M., Kujala, T., Pihlaja, K., Vuorela, H., Vuorela, P. 2000. Antimicrobial effects of Finnish plant extracts containing flavonoids and other phenolic compounds. Int. J. Food Microbiol, 56 : 3–12.
  • Taiz, L., Zeiger, E. 2008. Bitki Fizyolojisi-Üçüncü Baskıdan çeviri. Palme yayıncılık, 283-308.
  • Tepe, B., Degerli, S., Arslan, S., Malatyalı, E., Sarikurkcu, C. 2011. Determination of chemical profile, antioxidant, DNA damage protection and antiamoebic activities of Teucrium polium and Stachys iberica. Fitoterapia, 82 (2): 237–246.