Mehmet Sait TEKEREKOĞLU, Engin Burak SELÇUK, Yücel DUMAN, Okan ASLANTÜRK, Gökay GÖRMELİ, Mehmet Fatih KORKMAZ, Mustafa KARAKAPLAN

Orthopedic Surgical Wound Infection: Microorganisms and Resistance Figures

Amaç: Postoperatif dönemde modern ortopedik cerrahinin en önemli ve korkulan komplikasyonlarından biri cerrahi yara enfeksiyonlarıdır. Çalışmamızda ortopedik cerrahi sonrası bir yıllık sürede yara enfeksiyonlarından izole edilen mikroorganizmaların ve antimikrobiyallere direnç oranları araştırılmıştır. Yöntem: İzole edilen mikroorganizmaların konvansiyonel yöntemler ve otomatize sistemle (Phoenix Becton Dickinson ID) tür tayini yapılmıştır. Elde edilen türlerin antimikrobiyal duyarlılık testleri Clinical Laboratory Standards Institute önerileri doğrultusunda çalışıldı. Sonuçlar: İki yüz elli yedi yara örneğinden 96 (%37)'sında mikroorganizma izole edilmiştir. İzole edilen bakteriler sırasıyla Acinetobacter spp. 24 (%25), P. aeruginosa 19 (%20), S. aureus 15 (%16), E. coli 10 (%10), K. pneumonia 10 (%10), Koagulaz negatif stafilokok (KNS) 8 (%8), P. mirabilis 5 (%5), Enterobacter spp. 4 (%4) ve Enterococcus spp. 1 (%1) olarak belirlenmiştir. Acinetobacter spp. suşlarında imipeneme %92, amikasine %83, siprofloksasin %89 ve sulbaktam-ampisiline (SAM) %62 oranında direnç gözlenmiştir. E.coli suşlarında %10, K.pneumonia suşlarında ise %40 oranında GSBL (genişlemiş spektrumlu beta laktamaz) pozitifliği saptanmıştır. S.aureus suşlarının %7'si, KNS'lerin %50'si metisiline dirençli bulunmuştur. Sonuç: Sonuç olarak; gelişen cerrahi yara enfeksiyonu tedavisinde lokal epidemiyolojik verilerin dikkate alınmasının tedavideki başarı şansını arttıracağını, akılcı ve rasyonel antibiyotik kullanımını sağlayarak direnç oranlarını azaltacağı kanısındayız.

Ortopedik Cerrahi Yara Enfeksiyonları: Mikroorganizmaların Direncine İlişkin Veriler

Purpose: One of the most important and feared complications of modern orthopaedic surgery is postperative surgical wound infections. In this study, we aimed to investigate antimicrobial resistance rates of isolated microorganisms in wound infections after orthopaedic surgery. Methods: Isolated bacteria were identified with conventional methods and automated system (Becton Dickinson Phoenix ID). Antimicrobial susceptibility of the strains were investigated according to Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI) recommendations. Results:Ninety six (37%) microorganisms were isolated from 257 wound specimens. These were: Acinetobacter spp. 24 (25%), P. aeruginosa 19 (20%), S. aureus 15 (16%), E. coli 10 (10%), K. pneumoniae 10 (10%), CNS 8 (8%), P. mirabilis 5 (5%), Enterobacter spp. 4 (4%), and Enterococcus spp. 1(1%), respectively. Acinetobacter spp. strains were resistant to imipenem by 92%, to amikacin by 83%, to ciprofloxacin by 89%, and to sulbactam-ampicillin (SAM) by 62%. 10% of E. coli and 40% of K. pneumoniae strains were extended to spektrulu beta-lactamase positive. 7% of S. aureus, 50% of CNS strains were methicillin resistant. Conclusions: Considering local epidemiological data in the treatment of surgical wound infection is going to help increasing the chance of treatment success and reducing resistance rates by providing rational use of antibiotics.

PDF

___

1. Barbul A. Wound healing. In: Brunicardi FC,ed. Schwartz's Principles of Surgery, 8th edition. New York: McGraw-Hill; 2005. p.223-49.
2. Doğan SŞ, Paköz NE, Aral M. Laboratuvarımıza Gönderilen Yara Yeri Örneklerinden İzole Edilen Mikroorganizmalar ve Antibiyotiklere Direnç Durumları. Türk Mikrobiyol Cem Derg. 2010;40(4):243-9.
3. Diktaş H. Ortopedik cerrahi girişimlerle ilişkili enfeksiyonların irdelenmesi, Tez çalışması. 2011.
4. Guggenheim M, Zbinden R, Handschin AE, Gohritz A, Altintas MA, Giovanoli P. Changes in bacterial isolates from burn wounds and their antibiograms: a 20-year study (1986- 2005). Burns. 2009;35(4):553-60.
5. Forbes BA, Sahm DF, Weissfeld AS. Skin, soft tissue and wound infections. In: Tille MP, ed. Bailey&Scott's Diagnostic Microbiology. 11th edition. London: Mosby Co; 2002. p.978
6. Clinical Laboratory Standards Institute: Performance standarts for antimicrobial susceptibility testing, 19th edition. Supplement M100-S19: Clinical Laboratory Standards Institute, 2009.
7. National Institute for Health and Clinical Excellence: Surgical wounds scope (2004).http://www.nice.org.uk 8. Dikici N, Sümer Ş, Ural O. Cerrahi Alan Enfeksiyonları ve Profilaksisi. Selçuk Tıp Antimikrobik Bülteni. 2011;1(2):1-15.
9. Aragon LF: Surgical site infections: The surgical assistants role, (http:// www.nsaa.net/node/NSAAVol22No4.pdf 10. Atilla B, Alpaslan M. Materyaller ve Enfeksiyon. TOTBİD derg. 2002;1(2):111-3.
11. Erbay H, Yalçin AN, Serin S, Turgut H, Tomatir E, Çetin B. et al. Nosocomial infections in intensive care unit in a Turkish university hospital: a 2-year survey. Intensive Care Med, 2003;29:1482-8.
12. Willke A, Baksan S, Palabıyıkoğlu İ, Erdem B, Kökse T. Ankara Üniversitesi Tıp fakültesi İbn-i Sina Hastanesi'nde 1992-1998 yıllarında gözlenen hastane infeksiyonları. Hastane İnfeksiyonları Dergisi, 2001;5:31-7.
13. Geyik FM, Kökoğlu ÖF, Hoşoğlu S, Ayaz C, Boşnak V. Dicle Üniversitesi Hastanesi'nde nozokomiyal infeksiyonlar 1998. Hastane İnfeksiyonları Dergisi, 2000;4:160-3.
14. Yıldız O, Alp E, Duygulu F, Aygen B, Sümerkan B, Doğanay M. Erciyes Üniversitesi Hastanesinde Ortopedik Cerrahi Girişimlerden Sonra Gelişen Cerrahi Alan Enfeksiyonlarının prevalansı. Erciyes Tıp Derg. 2006;28(2):57-64.
15. Demirtürk N, Demirdal T. Kocatepe Üniversitesi Tıp Fakültesinde tespit edilen cerrahi alan infeksiyonlarının değerlendirilmesi: İki yıllık veriler. S.D.Ü. Tıp Fak. Derg. 2011;18(1):12-75.
16. Yurtsever SG, Kurultay N, Çeken N, Yurtsever Ş. Yara Yeri Örneklerinden İzole Edilen Mikroorganizmalar ve Antibiyotik Duyarlılıklarının Değerlendirilmesi. ANKEM Derg. 2009;23(1):34-8.
17. Bayram Y, Parlak M, Aypak C, Bayram İ. Three-year Review of Bacteriological Profile and Antibiogram of Burn Wound Isolates in Van, Turkey. Int. J. Med. Sci. 2013;10(1):19-23.
18. Mulu W, Kibru G, Beyene G, Damtie M. Postoperatıve Nosocomıal Infections and Antimicrobial Resistance Pattern Of Bacteria Isolates Among Patients Admitted at Felege Hiwot Referral Hospital, Bahirdar, Ethiopia. Ethiop J Health Sci. 2012; 22(1):7-18.
19. Chim H, Tan BH, Song C. Five-year review of infections in a burn intensive care unit: High incidence of Acinetobacter baumannii in a tropical climate. Burns. 2007;33(8):1008-14.
20. Karageorgopoulos DE, Falagas ME. Current control and treatment of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infections. Lancet Infect Dis. 2008;8(12):751-62.
21. Duman Y, Kuzucu Ç, Çuğlan SS. Kan Kültürlerinden izole edilen Bakteriler ve Antimikrobiyal Duyarlılıkları. Erciyes Tıp Derg. 2011;33(3):189-96.
22. Duman Y, Tekerekoğlu MS, Otlu B. Investigation of the Presence of Panton-Valentine Leukocidin and Clonal Relationship of Community- and Hospital-Acquired Clinical Isolates of Staphylococcus aureus. Mikrobiyol Bul. 2013;47(3):389-400.
23. Giske CG, Monnet DL, Cars O, Carmeli Y. ReAct-Action on Antibiotic Resistance; Clinical and economic impact of common multidrug- resistant gram-negative bacilli. Antimicrob Agents Chemother. 2008;52(3):813-21.
24. Duman Y, Güçlüer N, Serindağ A, Tekerekoğlu MS. Escherichia coli Suşlarında Antimikrobiyal Duyarlılık ve Genişlemiş Spektrumlu-?eta Laktamaz (GSBL) varlığı. Fırat Tıp Derg. 2010;15(4):197-200.
25. Gur D, Hascelik G, Aydin N et al. Antimicrobial resistance in Gram-negative hospital isolates: Results of the Turkish HITIT-2 Surveillance Study of 2007, J Chemother 2009;21(4):383-9.