206109

Bir İdris Anacı ‘Pontaleb’in Doku Kültürü İle Çoğaltılma Olanaklarının Araştırılması

Bu çalışmada, kiraz için önemli bir anaç olan idris popülasyonu içinden Fransa’da seçilen ‘Pontaleb’ tohum anacının doku kültüründe vejetatif olarak çoğaltılabilme olanağı araştırılmıştır. Sürgün uçları alındıktan sonra yüzey sterilizasyonu yapılarak dikim yapıldı. Murashige Skoog (MS) temel besin ortamı kullanılmış, bitki büyüme düzenleyicisi olarak 1-2 mg/l BAP, 0,1 mg/l IBA/NAA ile 0,1 veya 0,5 mg/l GA3 eklenmiştir. Çalışmada denenen ortamlar içinde sürgün gelişimi ve çoğalması dikkate alındığında 2 mg/l BAP + 0,1 mg/l NAA + 0,5 mg/l GA3 içeren MS ortamı diğerlerine göre daha başarılı bulunmakla birlikte çalışmada tatminkar sonuçlar elde edilememiştir.

Anahtar Kelimeler:

Anaç, kiraz, pontaleb, Prunus mahalep L., in vitro, çoğaltma

Investigation of the Possibilities of Propagation a Mahaleb Rootstock 'Pontaleb' by Tissue Culture

In this study, the possibility of vegetative propagation by tissue culture of ‘Pontaleb’ seedling rootstock selected from the mahaleb population in France which is an important rootstock for cherries was investigated. Shoot tip explants was taken and then surface sterilized and planted. Murashige Skoog (MS) medium supplemented with 1 and 2 mg/l BAP, 0,1 mg/l IBA or NAA and GA3 were used. For proliferation and multiplication, MS medium containing 2 mg/l BAP + 0,1 mg/l NAA + 0,5 mg/l GA3 was found to be more succesful than the others but satisfactory results were not obtained in the study.

Keywords:

Rootstock, cherry, pontaleb, Prunus mahalep L., in vitro, propagation,

PDF

___

Anonim, 1985. Ülkemizdeki Bazı Önemli Orman Tali Ürünlerinin Teşhis ve Tanıtımı Klavuzu. T.C. Tarım Orman ve Köyişleri Bak. Orman Gen. Müd. Yay., Yay. no:659, Seri no:18. Ankara.
Bošnjak, A.M., S. Kereša, I.H. Jerčić and M. Barić, 2012. The effect of cytokinin type and explant orientation on axillary shoot proliferation and in vitro rooting of Gisela 5 cherry rootstock, Journal of Food, Agriculture and Environment, 10 (3&4 ): 616-620.
Büyükdemirci, H. 2008. The effects of medium ingredients on shoot propagation and rooting of cherry rootstocks in vitro. Acta Horticulturae, 795: 419-422.
Damiano, C. and M.A. Palombi, 2000. La micropropagazione 20 anni dopo: innovazioni tecniche e ottimizzazione dei protocolli delle colture in vitro. Rivista di Frutticoltura, 62: 48-55.
Davis, D.S., 1972. Flora of Turkey and the East Aegean Islands. Volume 4:19.
Debnath, S.C., 2004. Clonal propagation of dwarf raspberry (Rubus pubescens Raf.) through in vitro axillary shoot pro¬liferation. Plant Growth Regulation, 43: 179–186.
Demiral, S. ve S. Ülger, 2008. Gisela 5 kiraz anacının doku kültürü ile çoğaltılması üzerine bir araştırma. Akdeniz Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 21 (1): 117–121.
Druart, P., 1996. Performance of the GM rootstocks in high density sweet cherry orchads. Acta Horticulturae, 410: 217-266.
Gerçekçioğlu, R. ve Ç. Çekiç, 1999. Mahalep (Prunus mahalep L.) çekirdeklarının çimlenmesi üzerine bazı uygulamaların etkileri. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 23 (1): 145-150.
Günal, F., 2006. Gisela 5 (P. cerasus x P. canescens) ve Maxma 14 (P. mahalep x P. avium) anaçlarından in vitro da sürgün elde edilmesi üzerine değişik BAP ve 2, 4- D düzeylerinin etkilerinin belirlenmesi. Süleyman Demirel Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi, 56 S.
Hepaksoy, S., 2004. Maxma 14 Kiraz Anacının İnvitro Üretimi, Anadolu Dergisi 14 (2): 67-80.
Hrotkó, K. and G. Simon, 1996. Effect of rootstock on the growth and productivity of cherry trees. Acta Hortic. 410, 519-526.
Iezzoni, A., H. Schmidt and A. Albertini, 1991. Cherries (Prunus). Acta Horticulturae, 290, III, 111–173.
Katzer, G., 2001. Mahlep, http://www.-ang.kfunigraz.ac.at/katzer/eng/prun.mahhtm/ (Erişim Nisan 2016).
Lugli, S., S. Mussachi, M. Grandi, G. Bassi, S. Franchini and M. Zago, 2011. The sweet cherry production in nortern Italy: innovative rootstock and emerging high-density plantings. Proceedings of the 3rd Conference “Innovations in Fruit Growing”, Belgrade, pp. 75-92.
Mahdavian, M., N. Bouzari and H. Abdollahi, 2011. Effects of media and plant growth regulators on micropropagation of a dwarfing cherry rootstock (PHL-A). Romania, Biharean Biologist 5 (2): 86-90. Article No: 111112.
Muna, A.S., A.K. Ahmad, K. Mahmoud and Abdul-Kade, M. Khoder and K. Abdul-Rahman, 1999. In vitro propagation of a semi-dwarfing cherry rootstock. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 59: 203–208.
Murashige,T. and F. Skoog, 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
Muriithi, L.M., T.S. Rangan and B.H. Waite, 1982. In vitro propagation of fig through shoot tip culture. HortScience, 17, 1, 86–87.
Nordstrom, A.C. and L. Eliasson, 1986. Uptake and translocation of C14-labled benzylaminopurine in apple shoots grown in vitro in relation to shoot development. Physiol Plantarium 68 (3): 431–435.
Perry, R.L., 1987. Cherry rootstocks. In: Rootstocks for Fruit Crops, R.C. Rom and R.F. Carlson (eds.), pp. 217-264. John Wiley & Sons, Inc., New York.
Ranjit, M. and D.E. Kester, 1988. Micropropagation of cherry rootstocks. II. Invigoration and enhanced rooting of 46-1 mazzard by co-culture with colt. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 113, 1, 150 – 154.
Skirvin, R.M. and M.C. Chu, 1979. In vitro propagation of “Forever Yours” rose. HortScience, 15 (4): 608-610.
Šiško, M., 2011. In vitro propagation of Gisela 5 (Prunus cerasus × P. canescens). Agricultura 8: 31-¬34.
Trefois, R., 1985. Dwarfing rootstocks for Sweet Cherries. Acta Hortitculturae, 169: 147-155.
Zilkah, S., E. Faingersh and A. Rotbaum, 1992. In vitro Propagation of three MxM (Prunus avium x P. mahaleb) cherry rootstocks. Acta Horticulturae, 314:201-208.