Klinik Olarak Solunum Sistemi Hastalığı Geliştirdikleri Saptanan Sığırlarda Fasciolazis İnvazyonunun Görülme Sıklığı ve Hastalığın Bazı klinik ve Hematolojik Parametreler Üzerine Etkisi

Bu çalışma Afyonkarahisar ilinde halk elinde bulunan yaşları 1-3 arasında değişen, toplam 30 baş sığırda yürütülmüştür. Dışkı muayenelerinde fasciolazisli oldukları tespit edilen solunum sistemi hastalıklı 10 hayvan Fasciola+Solunum Sistemi Hastalık Grubunu (FSG) oluştururken, dışkı muayenelerinde Fasciola etkeni tespit edilmeyen, ancak solunum sistemi hastalıklı 10 hayvan Solunum Sistemi Hastalık Grubunu (SG) ve dışkı muayenelerinde fasciola etkeni tespit edilmeyen ve klinik muayenelerde sağlıklı oldukları belirlenen 10 baş sığır ise kontrol Grubunu (KG) oluşturmuştur. Çalışma kapsamında hayvanların tümünde klinik, hematolojik ve dışkı muayeneleri yapılmış, çalışmanın sonunda hayvan sahiplerine uygun tedavi prosedürü tavsiye edilmiştir. FSG hayvanlarda ishal, öksürük ve burun akıntısı semptomlarının numerik olarak SG hayvanlardakine göre daha fazla olduğu, bu klinik bulguların KG hayvanlarda olmadığı gözlenmiştir. Gruplara ait vücut sıcaklığı, kalp ve solunum frekansları incelendiğinde; SG ve FSG hayvanların ortalamalarının KG hayvanlarda tespit edilen ortalamalardan istatistiki açıdan önemli derecede (p<0.05) yüksek olduğu, ancak SG ve FSG grupları arasında istatistiki açıdan önemli bir fark oluşmadığı (p>0.05) saptanmıştır. Hematolojik muayeneler sonucunda; en yüksek ve diğer gruplarla karşılaştırıldığında istatistiki açıdan önemli derecede (p<0.05), yüksek WBC, EOS ve MON düzeylerinin FSG hayvanlarda elde edildiği, buna karşılık bu grubun en düşük LENF oranına sahip olduğu ve farkın önemli (p<0.05) olduğu saptanmıştır. RBC, HB, HTC MHC ve MCHC ortalamalarının, KG hayvanlardaki ortalamalarıyla karşılaştırıldığında, istatistiki açıdan önemli derecede (p<0.05) yüksek olduğu, buna karşılık MCV düzeylerinin ise önemli derecede (p<0.05) düşük olduğu gözlenmiştir.

Anahtar Kelimeler:

Bulgular, fasciolazis, hematolojik, klinik, sığır

PDF

___

1. Snowder G, Van Vleck LD, Cundiff L, Bennett G. (2006). Bovine Respiratory Disease in Feedlot Cattle: Environmental, Genetic, and Economic Factors. J Anim Sci. 84: 1999-2008.
2. Closs G, Dechow C. (2017). The Effect of Calf-Hood Pneumonia on heifer Survival and Subsequent Performance. Livestock Sci. 205: (5), 5-9.
3. Krump L, Hamilton CM, Sekiya M, O’Neill R, Mulcahy G. (2014). The Effect of Fasciola Hepatica Infection on Respiratory Vaccine Responsiveness in Calves. Vet Parasitol. 201: 31–39.
4. Perino L, Hunsaker B. (1997). A Review of Bovine Respiratory Disease Vaccine Field Efficacy. Bovine Pract. 31: 59–66.
5. Blood DC, Radostits OM. (2007). Veterinary Medicine. Bailliere Tindall, London.
6. Boyunaga H, Schmitz MG, Brouwers JF, Van Hellemond JJ, Tielens AG. (2001). Fasciola Hepatica Miracidia Are Dependent on Respiration and Endogenous Glycogen Degradation for Their Energy Generation. Parasitology. 122(2) :169-73.
7. Kullberg M, Pearce E, Hieny S, Sher A, Berzofsky J. (1992). Infection with Schistosoma Mansoni Alters Th1/Th2 Cytokine Responses to a Nonparasite Antigen. J Immunol. 148: 3264-3270.
8. Anthony RM, Rutitzky LI, Urban JF, Stadecker MJ, Gause WC. (2007). Protective Immune Mechanisms in Helminth Infection. Nat Rev Immunol. 7: 975–987.
9. Elliott DE, Weinstock JV. (2012). Helminth-Host Immunological Interactions: Prevention and Control of Immune-Mediated Diseases. Ann NY Acad Sci. 1247: 83-96.
10. Mishra PK, Patel N, Wu W, Bleich D, Gause WC. (2013). Prevention of Type 1 Diabetes Through Infection with an Intestinal Nematode Parasite Requires Il-10 in the Absence of a Th2-Type Response. Mucosal Immunol. 6:297-308.
11. Salgame P, Yap GS, Gause WC. (2013). Effect of Helminth-Induced Immunity on Infections with Microbial Pathogens. Nature Immunol. 14(11): 1118-1126. 12. Zaccone P, Burton O, Miller N, Jones FM, Dunne DW, Cooke A. (2009). Schistosoma Mansoni Egg Antigens Induce Treg That Participate in Diabetes Prevention in NOD Mice. Eur J Immu-nol. 39:1098-1107.
13. Brady MT, O'Neill SM, Dalton JP, Mills KH. (1999). Fasciola Hepatica Suppresses a Protective Th1 Response Against Bordetella Pertussis. Infect Immun. 67(10): 5372-5378.
14. Flynn RJ, Mannion C, Golden O, Hacariz O, Mulcahy G. (2007). Experimental Fasciola hepatica Infection Alters Responses to Tests Used for Diagnosis of Bovine Tuberculosis. Infect Im-mun. 75(3): 1373-1381.
15. Resende COT, Hirsch CS, Toossi Z, Dietze R, Ribeiro-Rodrigues R. (2007). Intestinal Helminth Co-Infection Has a Negative Impact on both Anti-Mycobacterium Tuberculosis Immunity and Clinical Response to Tuberculosis Therapy. Clin Experim Immunol. 147(1): 45–52.
16. Cawdery M, Ruane M. (1971). Sedimentation Method for the Demonstration of the Eggs of Fasciola Hepatica in Faeces. Lab Pract. 20: 935-941.
17. Özkan AT, Korkmaz M, Kuman A, Ayçiçek H, Tanyüksel M. (2005). Fascioliasis Tanısında Erişkin Antijeni ile PBS ve RPMI 1640’da Elde Edilen Ekskresyon/Sekresyon Antijenlerinin Elisa Yöntemiyle Karşılaştırılması. T Hij Den Biyol Derg. 62 (1): 17 -26.
18. Sesen R, Yıldırım M. (1993). Parazitolojik Önemi Olan Türkiye Tatlı Su Salyangozları Üzerine Bir Çalışma. T Parazitol Derg. 17(3-4) : 138-147.
19. Kara M, Gicik Y, Sari B, Bulut H, Arslan M. (2009). A Slaughter-house Study on Prevalence of Some Helminths of Cattle and Sheep in Malatya Province, Turkey. JAVA. 8(11): 2200-2205.
20. Ayaz KC. (2014). Bolu Yöresinde Fasciolosis’in Seroprevalansı. Yüksek Lisans Tezi, Abant İzzet Baysal Üniversitesi, Bolu.
21. Aksoy DY, Kerimoğlu U, Oto A, et al. (2006). Fasciola Hepatica Infection: Clinical and Computerized Tomographic Findings of Ten Patients. Turk J Gastroenterol. 17: 40–45.
22. Teichmann D, Grobusch MP, Göbels K, Müller HP, Koehler W, Suttorp N. (2000). Acute Fascioliasis with Multiple Liver Abscesses. Scand J Infect Dis. 32: 558–560.
23. Aliaga L, Diaz M, Quiroga J. (1984). Eosinophilic Pulmonary Disease Caused by Fasciola Hepatica. Description of a Case and Review of the Literature. Med Clin (Barc). 82: 764-7.
24. King CH. (2007). Flukes (Liver, Lung and Intestinal). In: Klieg-man RM, Behrman RE, Jenson HB, Stanton BF (eds). Nelson Textbook of Pediatrics (18th ed). WB Saunders Elsevier, Philadelphia, USA.
25. Sezgi C, Cicek M, Sen HS, Kaya H, Taylan M, Abakay A, Abakay O, Dusak A, Tanrıkulu AC. (2013). Pulmonary Findings in Pa-tients with Fascioliasis. Acta Medica Mediterranea. 29: 841-847.
26. Tielens AG, van den Heuvel JM, van den Bergh SG. (1982). Changes in Energy Metabolism of the Juvenile Fasciola Hepatica During its Development in the Liver Parenchyma. Mol Biochem Parasitol. 6(5): 277-86. . 27. Cihan MK, Babür C, Olcay L. (2013). Fasciola Hepatica Infection as a Cause of Severe Hypereosinophilia. Turk J Hematol. 30(1): 88-90.
28. Kaya M, Beştaş R, Cetin S. (2011). Clinical Presentation and Management of Fasciola Hepatica Infection: Single-Center Experience. World J Gastroenterol. 17(44): 4899-4904.
29. Tristao-Sa R, Ribeiro-Rodrigues R, Johnson LT, Pereira FE, Dietze R. (2002). Intestinal Nematodes and Pulmonary Tuberculosis. Rev Soc Br Med Trop. 35(5): 533-535.
30. Wright V, Bickle Q. (2005). Immune Responses Following Experimental Human Hookworm Infection. Clin Exp Immunol. 142(2): 398-403.