İneklerde Subklinik Mastitis Tanısında Amiloid A ve C-Reaktif Protein Düzeylerinin Değerlendirilmesi

Subklinik mastitis, ineklerde en yaygın gözlenen önemli yangısal sürü hastalıklarından birisidir. Bu çalışmada hastalığın tan ısında süt ve kanda amiloid A (AA) ve C-reaktif protein (CRP) parametrelerinin yeni bir tanı seçeneği olarak ortaya konulması amaçlanmıştır. Çalışma laktasyonun farklı dönemlerinde bulunan toplam 40 adet Holstein ırkı sağmal inek üzerinde yürütüldü. Strip cup muayenesinin a rdından süt ve meme muayenesinde herhangi bir fiziksel bozukluk gözlenmeyen meme loblarına subklinik mastitis (SCM) tanısı amacıyla Kaliforniya Mastitis Testi (CMT) uygulandı. CMT’de sadece Ş ve +1 skorlar SCM pozitif olarak çalışmaya dahil edildi. Bu sonuçlar doğrultusunda 2 grup oluşturuldu; Grup I (n= 40), CMT yönünden her 4 meme lobu da negatif olan ineklere ait serum ve süt örnekleri, Grup II (n= 40)’ye ise CMT’ye göre pozitif olan serum ve süt örnekleri dahil edildi. Süt ve kan serumunda amiloid A ve CRP düzeyinin belirlenmesinde ticari ELISA kitleri kullanıldı. Çalışmada, ortalama AA düzeyleri sağlıklı olan serum ve süt örneklerinde sırasıyla 0.68±0.00 ng/ml; 0.66±0.00 ng/ml; SCM olanlarda ise sırasıyla 2.04±0.06 ng/ml ve 1.84±0.06 ng/ml belirlendi (p

Evaluation of Amyloid A and C-Reactive Protein Levels in The Diagnosis of Subclinic Mastitis in Cows

Subclinical mastitis is one of the most common inflammatory dairy herd diseases in cows. In this study, we aimed to present amyloid A (AA) and C-reactive protein (CRP) parameters in milk and blood as a new diagnostic option in the diagnosis of subclinical mastitis. The study was carried out on a total of 40 Holstein cows in different stages of lactation. After the strip cup examination, the California Mastitis Test (CMT) was applied for the diagnosis of subclinical mastitis (SCM).to the mammary lobes in which no physical symptom was observed in the milk and udder examination. Only S and +1 scores in CMT were included in the study as SCM positive. In line with these results, 2 groups were formed; serum and milk samples from cows with negative CMT in all 4 mammary lobes were included in Group I (n= 40), and serum and milk samples positive for CMT in Group II (n= 40) were included. In the study, mean AA levels were 0.68± 0.00 ng/ml; 0.66± 0.00 ng/ml in healthy serum and milk samples, respectively. In those with SCM, 2.04± 0.06 ng/ml and 1.84± 0.06 ng/ml were determined, respectively (p< 0.001). CRP levels were 0.17± 0.00 mg/ml; 0.15± 0.00 mg/ml in serum and milk in healthy group, respectively. It was calculated as 0.55± 0.01 mg/ml and 0.53± 0.01 mg/ml in SCM, respectively (p< 0.001). In the evaluation of acute phase protein parameters between groups; It was determined that AA and CRP milk and blood serum values were statistically significantly different between the groups. As a result, it is thought that AA and CRP may be prominent in determining subclinical mastitis.

___

  • 1. Baştan A. (2010). İneklerde Mastitis, Mastitis Çeşitleri (İçinde): İneklerde Meme Sağlığı ve Sorunları. s. 91-93, 118-122. Kardelen Ofset Matbaacılık, Ankara, Türkiye.
  • 2. Sabuncuoğlu N, Çoban Ö. (2006). Mastitis Ekonomisi. Atatürk Üniversitesi Vet. Bil. Derg. 1 (1-2) 1-5
  • 3. Vural R, Ergün Y, Özenç E. (2016). Büyük Ruminantlarda Mastitis (İçinde): Evcil Hayvanlarda Meme Hastalıkları. Kaymaz M, Fındık M, Rışvanlı A, Köker A, (editörler). Baskı 1. s. 149-159. Medipres Yayıncılık. Malatya, Türkiye.
  • 4. Gökçe İ, Bozukluhan K. (2009). Çiftlik Hayvanlarında Önemli Akut Faz Proteinleri ve Bunların Veteriner Hekimlik Alanındaki Kullanımı. Dicle Üniv Vet Fak Derg. 1(1):1- 14.
  • 5. El Nahas SM, El Kasas AH, Mossallem AAA, Abdelhamid MI, Warda M. (2017). A Study on IL8RB Gene Polymorphism as a Potential immuno-compromised Adherent in Exaggeration of Parenteral and Mammo-crine Oxidative Stress During Mastitis in Buffalo. J Adv Res. 8(6): 617–625.
  • 6. Viguier C, Arora S, Gilmartin N, Welbeck K, Kennedy R. (2009). Mastitis detection: current trends and future perspectives. Trend Biotechnol. Aug;27(8):486-93.
  • 7. Tóthová C, Nagy O, Seidel H and Kovác G. (2012). Acute Phase Proteins in Relation to Various İnflammatory Diseases of Calves. Comp. Clin. Pathol.21(5): 1037-1042.
  • 8. Sack GH. (2018). Serum Amyloid A – A review. Mol Med.24:46
  • 9. Jayaraman S, Gantz DL, Haupt and Gursky O. (2017). Serum Amyloid A Forms Stable Oligomers that Disrupt Vesicles at Lysosomal pH and Contribute to the Pathogenesis of Reactive Amyloidosis. Proc Natl Acad Sci USA. 114(32):E6507-E6515.
  • 10. Baranova IN, Bocharov AV, Vishnyakova TG, et al. (2010). CD36 Is a Novel Serum Amyloid A (SAA) Receptor Mediating SAA Binding and SAA-induced Signaling in Human and Rodent Cells, J.Biol Chem. 285(11):8492-8506.
  • 11. Eckersall PD, Young FJ, McComb C, et al. (2001). Acute Phase Proteins in Serum and Milk From Dairy Cows with Clinical Mastitis. Vet. Rec. 148(2): 35-41.
  • 12. Hussein HA, Razik KH, Gomaa AM, Elbayoumy MK, Abdelrahman KA and Hosein HI. (2018). Milk Amyloid A as a Biomarker for Diagnosis of Subclinical Mastitis in Cattle. Vet World. 11(1):34-41.
  • 13. Sevgisunar N, Şahinduran Ş. (2014). Acute Phase Proteins, Purpose of Uses and Clinical Importance in Animals. MAKÜ Sag. Bil. Enst. Derg. 2(1):50-72
  • 14. Jacob T, Subramani G, Sivaprakasam P, Xavier AP, Mukhopadhyay HK. (2017). Immuno-Detection of C3a, a C3 Complement Activated Product in Mastitis Milk, a Potential Diagnostic Marker. Vet Sci. 23;4(1).
  • 15. Schalm DW, Carroll EJ, Jaın NC. (1971). Bovine Mastitis. Philadelphia: Lea&Febiger.
  • 16. Harmon RJ, Eberhart RJ, Jasper DE, Langlois BE, Wilson RA. (1990). Microbiological Procedures for Diagnosis of Bovine Udder İnfection. National Mastitis Council Inc.
  • 17. Heikkilä AM, Liski E, Pyörälä S, Taponen S. (2018). Pathogen- Specific Production Losses in Bovine Mastitis. J Dairy Sci. Oct;101(10):9493-9504
  • 18. Gerardi G, Bernardini D, Azzurra Elia C, Ferrari V lob L, Segato S. (2009). Use of Serum Amyloid A and Milk Amyloid A in the Diagnosis of Subclinical Mastitis in Dairy Cows. J. Dairy Res. J. Dairy Nov;76(4):411-7.
  • 19. Thomas FC, Waterston M, Hastie P, Parkin T, Haining H, Eckersall PD. (2015). The major Acute Phase Proteins of Bovine Milk in a Commercial Dairy Herd. BMC Vet Res. Aug 15;11:207
  • 20. Jadhav PV, Das DN, Suresh KP, and Shome BR. (2018). Threshold Somatic Cell Count for Delineation of Subclinical Mastitis Cases. Vet World. 11(6):789–793.
  • 21. Sargeant JM, Leslıe KE, Shırley JE, Pulkrabek BJ, Lım GH. (2001). Sensitivity and Specificity of Somatic Cell Count and California Mastitis Test for Identifying Intramammary Infection in Early Lactation. J. Dairy Sci. 84: 2018-2024.
  • 22. Wollowski L, Heuwieser W, Kossatz A, et al. (2021). The Value of the Biomarkers Cathelicidin, Milk Amyloid A, and Haptoglobin to Diagnose and Classify Clinical and Subclinical Mastitis. J Dairy Sci. Feb;104(2):2106-2122.
  • 23. Çenesiz S, Gürler H, Fındık A, Çiftci G, Ertekin A, Çenesiz M. (2018). Acute Phase Proteins in Staphylococcus aureus Positive Milks. Etlik Vet Mikrobiyol Derg. 29 (2): 111-115.
  • 24. Akerstedt M, Forsbäck L, Larsen T, Svennersten-Sjaunja K. (2011). Natural Variation in Biomarkers İndicating Mastitis in Healthy Cows. J Dairy Res. Feb;78(1):88-96.
  • 25. Otsuka M, Sugıyama M, Ito T, Tsukano K, Oıkawa S and Suzukı K. (2021). Diagnostic Utility of Measuring Serum Amyloid A with a Latex Agglutination Turbidimetric İmmunoassay in Bovine Mastitis: Comparison with Haptoglobin and alpha 1 acid glycoprotein. J. Vet. Med. Sci. 83(2): 329–332.
  • 26. Grönlund U, Sandgren CH, Waller KP. (2005). Haptoglobin and Serum Amyloid A in milk from dairy cows with chronic sub-clinical mastitis Vet. Res. 36:191–198.
  • 27. Bochniarz M, Zdzisińska B, Wawron W, Szczubiał M, and Dąbrowski R. (2017). Milk and serum IL-4, IL-6, IL-10, and Amyloid A Concentrations in Cows with Subclinical Mastitis Caused by Coagulase- Negative Staphylococci. J. Dairy Sci. 100:9674–9680.
  • 28. Schrödl W, Krüger M, Hien TT, Füldner M, Kunze R. (1995). Creactive Protein as a new Parameter of Mastitis, Tierärztl. Prax. 23:337–341.
  • 29. Fetherston CM, Wells JI and Hartmann PE. (2006). Severity of Mastitis Symptoms as a Predictor of C-Reactive Protein in Milk and Blood During Lactation. Breastfeedıng Medıcıne. 19:3.
  • 30. Hamann J, Kruger M, Kretschmar M, Nipp B, Gyodi P. (1997). Creactive Protein in Milk of Healthy and Subclinically Diseased Bovineudder Quarters, Milchwissenschaft 52:546–550.
  • 31. Yogeshpriya S and Selvaraj P. (2019). C-Reactive Protein in Veterinary Practice. Dairy and Vet. Sci. J. 13: 555858.
  • 32. Eckersall PD, Conner JG. (1988). Bovine and Canine Acute Phase Proteins. Vet. Res. Commun. 169–178.
  • 33. Lehtolaınen T, Røntved C, Pyörälä S. (2004). Serum amyloid A and TNFα in Serum and Milk During Experimental Endotoxin Mastitis. Vet. Res. 35:651–659.
Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1307-9972
  • Yayın Aralığı: Yılda 2 Sayı
  • Başlangıç: 2008
  • Yayıncı: Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

İneklerde Subklinik Mastitis Tanısında Akut Faz Proteinlerinden Amiloid A ve C-Reaktif Protein Düzeylerinin Değerlendirilmesi

Tuğba ARMAĞAN AYDİN, Birten EMRE

Diyarbakır İli Süt Sığırı Yetiştiriciliğinin Sıcaklık-Nem İndeksi Yönünden Değerlendirilmesi

Romedi ÇELİK

Solunum Bozukluğu olan Sığırlarda Bulaşıcı Sığır Pleuropnömonisine Karşı Oluşan Hümoral İmmün Yanıtın Western Blot Tekniği, Kompleman fiksasyon testi ve Kompetatif Enzyme Linked İmmunosorbent Assay Testi ile Değerlendirilmesi

Sevil ERDENLİG, Ümit SEVİMLİ, Osman Yaşar TEL

Gürcü Keçilerinde Arteria Celiaca ve Dalları Üzerinde Araştırmalar

Ümran YAMAN, Tansel ÇAL, Semine DALGA

Cüce Hamsterlar’da (Phodopus roborovskii) Testisin Makro-Anatomik Yapısı

Saime Betül BAYGELDİ, Barış Can GÜZEL, Ender ÖZKAN

İneklerde Subklinik Mastitis Tanısında Amiloid A ve C-Reaktif Protein Düzeylerinin Değerlendirilmesi

Tuğba ARMAĞAN AYDIN, Birten EMRE

Bir Buzağıda Kongenital Unilateral Lateral Patella Luksasyonu

Latif Emrah YANMAZ, Uğur ERSÖZ, Sıtkıcan OKUR, Ömer Tarık ORHUN, Ayşe GÖLGELİ

Yetiştirici Koşullarında Akkaraman-Şavak Kuzularının Büyüme Performanslarının Araştırılması

Hasan ÇETİN, Şahin TEZ, Tahir BAYRIL

Konya Yeşil Peynirlerinin Biyojen Amin İçerikleri ile Bazı Fizikokimyasal ve Mikrobiyolojik Özelliklerinin Belirlenmesi

Nihat TELLİ

Cüce Hamsterlar’da (Phodopus roborovskii) Testisin Makro-Anatomik Yapısının İncelemesi

Z. Ender ÖZKAN, Betül BAYGELDİ, Barış Can GÜZEL