Kordon kanında hematolojik parametreler ve antioksidan enzim düzeyleri

AMAÇ: Yenidoğan bebeklerde oksijen toksisitesine karşı antioksidan sisteme önemli görevler düşmektedir. Çalışmamızda sezaryen operasyonu ile doğan bebeklerdeki kordon kanında antioksidan enzim ve hematolojik parametreler incelenerek yetişkin değerleriyle karşılaştırılması amaçlandı. YÖNTEM: Bunun için kordon kanı ve sağlıklı erişkinlerde hematolojik parametrelerden; tam kan sayımı, serum demir ve demir bağlama kapasitesi (TDBK), ferritin, transferrin (Tf), soluble transferrin reseptörü (sTfR), antioksidanlardan; glukoz 6 fosfat dehidrogenaz (G6PD), katalaz (CAT) ve lipid peroksidasyon göstergesi tiobarbitürik asit reaktif substans (TBARS) düzeyleri ölçüldü. SONUÇLAR: Kahramanmaraş Sütçü imam Üniversitesi Araştırma ve Uygulama Hastanesi Kadın Hastalıkları ve Doğum Kliniği'nde yapılan sezaryenler sırasında alınan 24 kordon kanı ile kontrol olarak 30 sağlıklı yetişkin kan örneği kullanıldı. Kordon kanında; Lökosit: 11,64±0,49 K/$mu$L, eritrosit: 4,12±0,39 M/$mu$ L, hemoglobin: 14,85±0,36 g/dL, hematokrit: % 41,40+1,03, ortalama eritrosit hacmi: 101,65±1,16 fL, trombosit: 259,04±11,25 K/ $mu$L, eritrosit dağılım aralığı: % 17,74±1,35, sTfR: 1,97±0,10 mg/L, Tf: 1,49±0,10 g/L, ferritin: 119,26±24,32 ng/mL, demir: 166,90+13,99 $mu$g/dl, serum TDBK: 216,16±15,41 $mu$g/dl, eritrosit G6PD: 14,28+0,91 Ü/g Hb, eritrosit CAT: 21,79±1,41x$10^4$ Ü/g Hb, plazma TBARS: 3,54±0,20 nmol/ml olarak bulundu. Sonuç olarak kordon kanındaki hematolojik parametre düzeyleri ile CAT, G6PD ve TBARS düzeyleri yetişkin düzeylerine oranla yüksek bulundu. YORUM: Tüm hücrelerde oksijen kullanımının sonucu olarak reaktif oksijen türleri (ROT) oluşmaktadır. Hücre için oldukça toksik olan bu maddelerin etkisiz hale getirilmesinde antioksidan enzimler (CAT, G6PD vb.) önemli görev alarak ROT'nin hücreye zarar vermesini önleyici yönde aktivite göstermektedirler. Denge ROT lehine bozulduğunda hücrenin zarar görmesi kaçınılmaz olabilir. Umbilikal kord kanında antioksidanların yüksek düzeyde olması, yeni doğanların yetişkinlere oranla ROT'lara karşı daha güçlü bir koruma mekanizmasına sahip olduğu düşünülebilir.

Haematological parameters and antioxidant enzyme levels in cord blood

PURPOSE: The interaction between various antioxidants may be important in protecting the newborn baby against oxygen toxicity. The aim of this study is to compare antioxidant level and hematological parameters of the umbilical cord blood of cesarean section delivered babies and the controls. METHOD: The complete blood count, serum iron and iron binding capacity, ferritin, transferrin (Tf), soluble transferrin receptor (sTfR), antioxidants; glucose 6 phosphate dehydrogenase (G6PD), catalase (CAT), thiobarbituric acid reactive substance (TBARS) levels hematological parameters were measured in the cord and adult blood. RESULTS: Our working groups included 24 pregnant women resorting to Kahramanmaraş Sütçüimam University Gynecology and Obstetric clinic and the control group was 30 healthy females and males. The parameters of the cord blood were as following; leukocyte: 11,64±0,49 K/$mu$L, erythrocyte: 4,12±0,39 M/$mu$L, hemoglobin: 14,85+0,36 g/dL, hematocrit: % 41,40±1,03, main corpuscular volume: 101,65±1,16 fL, platelet: 259,04±11,25 K/$mu$L, red cell distribution width: % 17,74±1,35, sTfR: 1,97±0,10 mg/L, Tf: 1,49±0,10 g/L, ferritin: 119,26±24,32 ng/mL, iron: 166,90±13,99 $mu$g/dl, plasma TIBC: 216,16±15,41 $mu$g/dl, erythrocyte G6PD: 14,28±0,91 U/g Hb, erythrocyte Cat: 21,79±1,41x$10^4$ Ü/g Hb, TBARS: 3,54±0,20 nmol/ml. As a result cord blood antioxidant and hematological! parameters were higher than the blood parameters of adults'. CONCLUSION: Reactive oxygen species (ROS) appear in every cell a consequence of its aerobic metabolism. ROS are very toxic compounds for the living cells but antioxidants (CAT, G6PD) are defense system against the oxidant stress. If the balance shifts in favor of ROS, cell damage is an inevitable result. It has been suggested that in spite of the antioxidant system cell damage occurs in some degree in newborns: who are exposed to oxygen toxicity after delivery.

___

  • 1. Andersen HR, Nielsen JB, Nielsen F, Grandjean P. Antioxidative enzyme activities in human erythrocytes. Clin Chem 1997;43 (4): 562.
  • 2. Bainy ACD, Saito E, Carvalho PSM, Junqueria VBC. Oxidative stress in gill, erythrocytes, liver and kidney of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) from a polluted site. Aquatic Toxicol 1996;34: 151-162.
  • 3. Beutler E. Red Ceil Metabolism. (2nd. Ed) Grune and Stratton Company, New York, 1975; 261-265.
  • 4. Çolak Ö, Alataş Ö, Çelik M, İnal M. Hipertiroidizm olgularında serum lipid peroksit ve vitamin E düzeyleri. Optimal Tıp Der 1994;7: 61-63.
  • 5. Carpani G, Buscaglia M, Ghisoni L, Pizzotti, Vozzo N, Bellotti M, Moroni G. Soluble tranferrin receptor in the study of fetal erytpoietic activity. Am J Hematol 1996;52 (3): 192-196.
  • 6. Choi JW, Kim CS, Pai SH. Erythropoietic activity and soluble transferrin receptor level in neonates and maternal blood. Acta Paediatr 2000;89(6): 675-679.
  • 7. Ergül Belge Kurutaş. Endosulfanın Kan, Karaciğer ve Meme Dokusu Üzerine Etkisi. Doktora Tezi. Adana, 1999.
  • 8. Hazel Lum and Kenneth A Roebuck. Oxidant stress and endothelial cell dysfunction. Am J Physiol Cell Physiol 2001;280:C719-C741.
  • 9. Jones GL, Masters CJ. On the comparative characteristics of mammalian catalas.es. Comp Biochem Physiol 1976;55: 511-518.
  • 10. Kılınc M, Büyükbeşe MA, Güler Fİ et al.Demir eksikliği anemisinde soluble transferrin reseptörünün (sTfR) önemi. Çukurova Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi, 2002;2(27):41-45.
  • 11. Lindeman J H N, Van Zoeren-Grobben D, Schrıjver J et al. The Total Free. Radical Trapping Ability of Cord Blood Plasma in Preterm and Term Babies. Pediatric Research, 1989;26;1:20-24.
  • 12. Manno M, Bertazzon A, Burlina A, Galzigna L. Interaction of low doses of ionizing radiation and carbon tetrachloride on liver superoxide dismutase and glutathione peroxidase in mice. Enzyme1985;34: 107-112.
  • 13. McCord JM. Iron free radicals and oxidative injury. Semin Hematol, 1998;5: 10-12.
  • 14. Mehlhasa J and Grune T . Proteolytic response to oxidative stress in mammalian cells, Biol Chem, 2002;383:559-567
  • 15. Okawa H, Ohishi N, Tagi K. Assay for lipid peroxide in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem 1979;95: 351-358.
  • 16. Rogers MS, Mongelli Max, Tsang Ka Hung, Wang CC. Fetal and maternal levels of lipid peroxides in term pregnancies. Acta Obstet Gynecol Scand 1999;78:120-124.
  • 17. Sela S, Shurtz-Swirski R, Awad' J et al. The involvement of peripheral polymorphonuclear leukocytes in the oxidative stress and inflammation among cigarette smokers. Isr Med Assoc J 2002;4(11):1015-1019.
  • 18. Travis SF, Kumar SP, Paez PC et al. Red cell metabolic alterations in postnatal life in term infants: glycoltic enzymes and glucose-6-phosphate dehydrogenase. Pediatr Res 1980;14(12):1349-52.
  • 19. Yacobi N, Ohel G, Hochman A. Reactive oxygen species in the process of labor. Arch Gynecol Obstet 1999;263:23-24.