Ceviz ve Bademde Prune dwarf virus, Prunus necrotic ringspot virus ve Cherry leaf roll virus Yoğunluklarının Mevsimsel Değişimi

Bademde Prune dwarf virüs (PDV) ve Prunus necrotic ringspot virüs (PNRSV), cevizde ise Cherry leaf roll virüs (CLRV) ile doğal enfekteli olduğu belirlenmiş ağaçlardan en uygun örnek alma dönemini belirlemek üzere bölgemizde ilk defa böyle bir çalışma yürütülmüştür. 2014 yılı vejetasyon dönemi boyunca yaklaşık olarak iki haftada bir 2 badem ve 2 ceviz olmak üzere toplam 4 ağaçtan yaprak örnekleri DAS-ELISA ile testlenmiştir. Elde edilen sonuçlara göre her üç virüsün konsantrasyonu ilkbaharda en yüksek absorbansa (PNRSV için 1,891, PDV için 0,507 ve CLRV için 2,22) ulaşırken sıcaklıkların yükselmesi ile Temmuz ayından itibaren konsantrasyonun negatif absorbans değerleri verdiği görülmüştür. Sonbaharda Ekim ayından itibaren PNRSV, PDV ve CLRV-1 izolatlarının tekrar pozitif absorbans değerlerine ulaştığı saptanmıştır. CLRV-2 izolatı ise sadece Temmuz sonuna kadar pozitif sonuç vermiş sonraki aylarda vegetasyon sonuna kadar negatif değerlerde seyretmiştir. Bütün ceviz ve badem izolatlarında; PNRSV, PDV ve CLRV için en uygun örnekleme zamanının ilkbahar ayları olduğu sonucuna varılmıştır.

Anahtar Kelimeler:

Enfeksiyon oranı, PNRSV, PDV, CLRV

PDF

___

Anonymous, 2016. National Diagnostic Protocol for CLRV( Cherry and Walnut Strains). Australian Government Department of Agriculture, Fisheries and Forestry. http://plantbiosecuritydiagnostics.net.au/wordpress/wp- content/uploads/2015/03/NDP-10-Cherry-Leaf-Roll-Virus-V1.2.pdf
Anonymous,2011.http://www.uyurgezer.net/meyvecilik-kulturu-ve-turkiye-meyve-uretimi-t97324.html
Barba, M. ve Riccioni, L., 1993. Improvement of Diognostic Methods to Detect Plum Pox Virus in Apricot Plants. Agriculture, 139- 141.
Clark, M. F. ve Adams, A. N., 1977. Characteristics Of The Micro-Plate Method Of Enzime Linked Immuno Sorbent Assay For The Detection Of Plant Viruses. Journal Of General Virology. 34, 475-483.
Clark, M.F. & Bar-Joseph, M. 1984. Enzyme immunosorbent assays in plant virology. Methods Virol., 7: 51-85.
Gerik J.S., Duffus,J.E., Perry,R., Stenger,D.C. ve Van Maren,A.F. 1990. Etiology of tomato plant decline in the California desert. Phytopathology, 80, 1352–1356.
Harrison, B. D., 1956. Relationship between Beet ringspot, Potato Bouquet and Tomato black ring viruses. J. Gen. Microbiology 18, 450-460.
Helguera, P.R., Docampo, D.M., Nome, S.F. ve Ducasse, D.A., 2002. Enhanced Detection of Prune Dwarf Virus in Peach Leaves by İmmunocapture- Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction with Nested Polymerase Chain Reaction (IC-RT-PCR Nested PCR). J.Phytopathology 150, 94-96. Blackwell Wissenschafts-Verlag, Berlin.
Hine R.B., Osborne,W.E. ve Dennis,R.E. 1970. Elevation and temperature effects on severity of maize dwarf mosaic virus in sorghum in Arizona. Plant Dis. Rep., 54, 1064–1068.
Hull R. 2002. Matthews’ Plant Virology. p. 1001. Fourth ed. Academic Press; London, UK:
Johnson, J. 1922. Experimental evidence relating to the nature of the mosaic virus. Phytopathology 12:52 (Abstr.)
Karesova, R. ve Paprstein, F. 2001. Apple chlorotic leaf spot virus in germplasm collection of fruit species. Acta Hortic. 550:259-264.
Kobylko, T., Nowak, B., 2006. Detection and ocuurence of Apple mosaic virus in hazelnut in south-east Poland. Journal of Plant Pathology 88(1): 122
Moury, B., Cardin, L., Onesto, J-P, Candresse, T. ve Poupet, A. 2001. Survey of Prunus necrotic ringspot virus in rose and its variability in rose and Prunus spp. Phytopathology. 91: 84-91.
Salem, N., Mansour, A., Al-Musa, A., ve Al-Nsour, A., 2003. Seasonal variation of Prunus necrotic ringspot virüs consentration in almond, peach and plum cultivars. Phytophathologia Mediterranea 42, 155-160.
Varveri, C., Holeva, R., Bem, F.P., 1997. Effect of sampling time and plant part on the detection of two viruses in Apricot an done in Almond by ELISA. Annales de 1'Institut Phytopathologyque, Benaki. 18(1):25-33.
Zotto, A.D., Nome, S.F., Rienzo, J.A. di, Docampo, D.M., 1999. Fluctuations of PNRSV at various phenological stages in peach cultivars. Plant diseases, 83(11):1055-1057.