Bazı havuç çeşitlerinin kök-ur nematodu türlerine (Meloidogyne spp. Goeldi, 1982) karşı reaksiyonu

Kök-ur nematodlarının diğer sebzelerde olduğu gibi havuç bitkisinde de önemli verim kayıplarına yol açtığı bilinmektedir. Bu çalışmada İç Anadolu Bölgesi’nde ticari olarak yaygın şekilde kullanılan üç farklı havuç çeşidinin dört farklı kök-ur nematodu türüne karşı reaksiyon durumları 2018 yılında iklim odasında saksı denemeleri ile değerlendirilmiştir. Köklerde oluşan ur ve yumurta paketi sayılarına göre Romance, Chantenay, Nantes çeşitleri Meloidogyne chitwoodi, M. javanica, M. incognita ve M. hapla’ya karşı hassas bulunmuştur. Meydana getirdikleri yumurta paketi ve gal sayılarına göre M. chitwoodi ve M. incognita türlerinde, çeşitler arasında fark tespit edilmemiştir (P>0.05). M. javanica türünün 234.4 adet yumurta paketi ve gal ile en fazla Nantes çeşidinde; M. hapla’nın ise 193.6 adet ile en fazla Nantes çeşidinde çoğaldığı belirlenmiştir (P<0.05). Çeşitler açısından ise Chantenay çeşidinde türler arasında fark tespit edilmemiş olup (P>0.05), Nantes çeşidinde M. javanica (234.4) ve M. hapla (193.6), Romance çeşidinde ise M. javanica (207.8), M. hapla (176.4) ve M. chitwoodi (141.6) türleri aynı grupta yer almıştır (P<0.05). Çalışma sonucunda Romance, Chantenay ve Nantes havuç çeşitlerinin kök-ur nematodlarına hassas olduğu ve bulaşık alanlarda bu çeşitlerin kullanımında dikkatli olunması gerektiği sonucuna ulaşılmıştır.

Reaction of some carrot varieties against root-knot nematode species (Meloidogyne spp. Goeldi, 1982)

Root-knot nematodes (Meloidogyne spp.) cause serious damage by forming galls on the roots of the many vegetables host plants including carrots. In this study, the reactions of three different carrot varieties that are commercially used in the Central Anatolia region were evaluated against four different types of root-knot nematodes in a growth chamber pot trial in 2018. Based on the observation of root galling and the egg-mass numbers, Romance, Chantenay and Nantes carrot varieties were considered susceptible to Meloidogyne chitwoodi, M. javanica, M. incognita and M. hapla. There were differences in egg-mass and gall numbers among all carrot varieties for both M. chitwoodi and M. incognita (P>0.05). M. javanica reproduced the highest number of 234.4 egg masses and gall numbers on Nantes variety respectively. On the other hand, M. hapla reproduced 193.6 egg masses and galling on Nantes variety. From the carrot variety point of view, no differences detected between the nematode types on Chantenay. However on Nantes variety M. javanica (234.4), M. hapla (193.6) and on Romance M. javanica (207.8), M. hapla (176.4) and M. chitwoodi (141.6) were categorized in the same group. As a result of the study, it was concluded that Romance, Chantenay and Nantes carrot varieties are sensitive to root-knot nematodes. Because of this, these varieties should be used carefully in contaminated areas.

___

  • Ansari T., Asif M., Siddiqui M.A., 2018. Resistance screening of lentil cultivars against the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Hellenic Plant Protection Journal, 11, 9–18.
  • Atkinson H.J., Lilley C.J., Urwin P.E., 2012. Strategies for transgenic nematode control in developed and developing world crops. Current Opinion Biotechnolgy, 23, 251–256.
  • Belair G., 1984. Tolerance of carrot cultivars to northern root-knot nematode as influenced by pre-plant population densities. Phytoprotection, 65, 69–73.
  • Boerma H.R., Hussey R.S., 1992. Breeding plants for resistance to nematodes. Journal of Nematology, 24 (2), 242- 252.
  • Boiteux L.S., Belter J.G., Roberts P.A., Simon P.W., 2000. RAPD linkage map of the genomic region encompassing the rootknot nematode (Meloidogyne javanica) resistance locus in carrot. Theoretical and Applied Genetics, 100, 439–446.
  • Colombo A., Buonocore E., 2001. The carrot cyst nematode, Heterodera carotae, in Sicily. Informatore Fitopatologico, 51 (6), 74-75.
  • Davis R.M., Raid R.N., 2002. Compendium of umbelliferous crop diseases. American Phytopathological Society, St. Paul, Minnesota, USA, 163-168 p.
  • Daykin M.E., Hussey R.S., 1985. Staining and histopathological techniques in nematology. In: Barker K.R., Carter C.C., Sasser J.N. (Eds.). An advanced treatise on Meloidogyne: volume II. North Carolina State University Graphics, Raleigh, North Carolina, USA, 39-48 p.
  • FAO 2017. Food and Agriculture Organization of the United Nations http://www.fao.org/faostat/en/#data/QC (Erişim tarihi: 10.06.2019).
  • Gugino B.K., Abawi G.S., Ludwig J.W., 2006. Damage and management of Meloidogyne hapla using oxamyl on carrot in New York. Journal of Nematology, 38, 483-490.
  • Hartman K.M., Sasser J.N., 1985. Identification of Meloidogye species on the basis of differential host test and perinealpattern morphology. In: Barker K.R., Carter C.C., Sasser J.N. (Eds.). An advanced treatise on Meloidogyne. Volume II: Methodology. North Carolina State University Graphics, Raleigh, North Carolina, USA, 69-77 p.
  • Huang S.P., Della Vecchia P.T., Ferreira P.E., 1986. Varietal response and estimates of heritability of resistance to Meloidogyne javanica in carrots. Journal of Nematology, 18, 496–501.
  • Hussey R.S., Barker K.R., 1973. A comparison of methods for collecting inocula for Meloidogyne spp., including a new technique. Plant Disease Reporter, 57, 1025-1028.
  • Lopez–Perez J.A., Strange M.L., Kaloshian I., Ploeg A.T., 2006. Differential responce of Mi gene resistant tomato rootstocs to root knot nematodes (Meloidogyne incognita). Crop Protection, (25), 382-388.
  • Mukhtar T., Kayani M.Z., Hussain M.A., 2013. Response of selected cucumber cultivars to Meloidogyne incognita. Crop Protection, 44, 13-17.
  • Noling J.W., Becker J.O., 1994. The challenge of research and extension to define and implement alternatives to methyl bromide. The Journal of Nematology, 26 (4s), 573-586.
  • Nordalyn P., 2012. Incidence damage potential and management of the root-knot nematode Meloidogyne incognita on semi temperate vegetables in the Highlands of Benguet Province Philippines, PhD Thesis, Faculty of Bioscience Engineering, Leuven, 149 pages.
  • Roberts P.A., 1987. The influence of planting date of carrot on Meloidogyne incognita reproduction and injury to roots. Nematologica, 33, 335–342.
  • Roberts P.A., Magyarosy A.C., Matthews W.C., May D.M., 1988. Effects of metam-sodium applied by drip irrigation on root-knot nematodes, Pythium ultimum, and Fusarium sp. in soil and on carrot and tomato roots. Plant Disease, 72, 213- 217.
  • Rodrigues S.C., 2017. Nematoides das galhas associados à cultura da cenoura na região do Distrito Federal e reação de cultivares. 131 f., il. Tese (Doutorado em Fitopatologia)— Universidade de Brasília, Brasília, 2017. Root-knot nematodes associated with carrot crop in Federal District region, and reaction of cultivars.
  • Santo G.S., Mojtahedi H., Wilson J.H., 1988. Host-parasite relationship of carrot cultivars and Meloidogyne chitwoodi races and M. hapla. Journal of Nematology, 20 (4), 555.
  • Simon P.W., Matthews W.C., Roberts P.A., 2000. Evidence for simply inherited dominant resistance to Meloidogyne javanica in carrot. Theoretical and Applied Genetics, 100 (5), 735-742.
  • Sivakumar M., Sivagami V., 1994. Studies on the yield loss due to Meloidogyne hapla. Indian Journal of Nematology, 24 (2), 189-190.
  • Slinger L.A., Bird G.W., 1977. Growth and development of carrot in the presence of Meloidogyne hapla. Journal of Nematology, 9, 284.
  • Steyn W.P., Daneel M.S., Slabbert M.M., 2014. Host suitability and response of different vegetable genotypes to Meloidogyne incognita race 2 and Meloidogyne javanica in South Africa. International Journal of Pest Management, 60, (1), 59-66.
  • Taba S., Sawada J., Moromizato Z., 2008. Nematicidal activity of Okinawa island plants on the root-knot nematode Meloidogyne incognita (Kofoid and White) Chitwood. Plant and Soil, 303, 207–216.
  • TÜİK 2018. Türkiye İstatistik Kurumu. https://biruni.tuik. gov.tr/medas/?kn=92&locale=tr (Erişim tarihi: 15.06.2019).
  • Wesemael W., Moens M., 2008. Quality damage on carrots (Daucus carota L.) caused by the root-knot nematode Meloidogyne chitwoodi. Nematology, 10 (2), 261-270.
  • Widmer T.L., Ludwig J.W., Abawi G.S., 1999.The northern root-knot nematode on carrot, lettuce, and onion in New York, Cornell University, Geneva. https://ecommons.cornell. edu/handle/1813/1508 (Erişim Tarihi: 26.02.2020).
  • Vrain T.C., 1982. Relationship between Meloidogyne hapla density and damage to carrots in organic soils. Journal of Nematology, 14, 50-57..
  • Vrain T.C., Baker L.R., 1980. Reaction of hybrid carrot cultivars to Meloidogyne hapla. Canadian Journal of Plant Pathology, 2, 163-168.
  • Yanmaz R., Duman İ., Yaralı F., Demir K., Sarıkamış G., Sarı N., Balkaya A., Kaymak H.Ç., Akan S., Özalp R., 2015. Sebze üretiminde değişimler ve yeni arayışlar. Türkiye Ziraat Mühendisliği VIII. Teknik Kongresi, Bildiriler Kitabı - 1, 12- 16 Ocak 2015, TMMOB Ziraat Mühendisleri Odası, Ankara, 579-605.
  • Yarger L.W., Baker L.R., 1981. Tolerance of carrot cultivars and breeding lines to Meloidogyne hapla. Plant Disease, 65, 337–339.
  • Zuckerman B.M., Esnard J., 1994. Biological control of plant nematodes-current status and hypothesis. Japanese Journal of Nematology, 24, 1-13.
Bitki Koruma Bülteni-Cover
  • ISSN: 0406-3597
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1952
  • Yayıncı: Zirai Mücadele Merkez Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü
Sayıdaki Diğer Makaleler

Ankara’da soğan (Allium cepa L.) ve pırasayı (Allium ampeloprasum L.) enfekte eden Pırasa sarı çizgi virüsü’nün (Leek yellow stripe potyvirus) serolojik ve moleküler olarak tanılanması

Adyatma İrawan SANTOSA, Filiz ERTUNÇ

Achillea millefolium L. (Asteraceae) uçucu yağının kimyasal bileşimi ve Sitophilus granarius (Coleoptera: Curculionidae) ve Rhyzopertha dominica (Coleoptera: Bostrichidae)’ya karşı insektisidal aktivitesi

Mustafa ALKAN

Erzincan ili bağ alanlarında fitoplazma hastalıklarının ve olası vektör böcek türlerinin tespiti

Yılmaz KARABIÇAK, İsmail ALASERHAT, Şenol ALTUNDAĞ, İşıl ÖZDEMİR, Emine Demir ÖZDEN

Adana ekolojik koşullarında Phyllocoptruta oleivora (Ashmead) (Acari: Phyllocoptidae)’nın popülasyon gelişmesi

Serdar SATAR, Gülsevim TİRİNG, Dindar İŞPINAR, Miraç YAYLA

Bazı bitki fungal patojenlerinde dsRNA mikovirüslerinin varlığının taranması

Sahra HOSSEİNALİZADEH, Ömer ERİNCİK, Serap AÇIKGÖZ

Çukurova bölgesi pamuk alanlarında Aphis gossypii (Glover)’da aşırı düzeyde sitokrom P450 genleri ekspresyonu

Selçuk ULUSOY

Türkiye çim alanlarındaki ak üçgüllerdeki (Trifolium repens L.) fungusların belirlenmesi ve patojenisite çalışmaları

Filiz ÜNAL, Senem TÜLEK, Mesrur Ümit BİNGÖL, Ömer ÖZTÜRK, Yeşim EĞERCİ, İlker KURBETLİ, Sirel CANPOLAT, Kamil SARPKAYA, Abdullah ÜNLÜ, Fatma Sara DOLAR

Doğu Akdeniz Bölgesinde badem ağaçlarında görülen bazı virüs hastalıklarının saptanması ve karakterizasyonu

Mahmut YEGÜL, Saadettin BALOĞLU

Diyarbakır ilinde yetişen badem ağaçlarında sorun olan kök çürüklüğü ve solgunluk hastalık etmenlerinin karakterizasyonu ve yaygınlığı

Zekiye Ceren AKTAN, Soner SOYLU, Osman ÇİFTÇİ, Şahimerdan TÜRKÖLMEZ

Bazı havuç çeşitlerinin kök-ur nematodu türlerine (Meloidogyne spp. Goeldi, 1982) karşı reaksiyonu

Emre EVLİCE, Fatma Dolunay ERDOĞUŞ, Gökhan YATKIN