Batı Karadeniz Bölgesinde örtü altında yetiştirilen fasülyelerde köşeli yaprak lekesi etmeni Pseudocercospora griseola (Sacc.) Ferraris (=Isariopsis griseola Sacc.)’nın izolasyonu

Fasülye yüksek protein oranına sahip olması nedeniyle tüketicilerin, pazar sorununun olmamasından dolayı Batı Karadeniz Bölgesi üreticilerinin önemli tercihi olmuştur. Ülkemizde ilk defa Zonguldak ili Çaycuma ilçesinde tespit edilen ve fasülyede köşeli yaprak lekesine neden olan Pseudocercospora griseola bu bölgedeki yerel fasülye çeşitlerinde ciddi zararlara neden olmuştur (Ozan 2009). Bu fungusla yapılan çalışmaları kısıtlayıcı önemli nedenlerden birisi yapay besi yerlerinde çok yavaş gelişmesi veya gelişmemesidir. P. griseola izolasyonu sırasında güçlük yaşanan ve çok yavaş gelişen mitosporik bir fungustur. Bu nedenle mikolojik açıdan bilinen klasik izolasyon metotları denenmiş ve etmen geliştirilememiştir. Bu çalışmada fungusun ait olduğu cinsteki diğer türlerin izolasyon yöntemleri, bu yöntemlerin modifiye edilmiş şekilleri ve daha önce denenmeyen bazı yöntemler denenerek etmen için en uygun izolasyon yöntemleri araştırılmıştır.

Isolation of Pseudocercospora griseola (Sacc.) Ferraris (=Isariopsis griseola Sacc.), causing angular leaf spot on common bean grown in greenhouses in the Western Blacksea Region

Bean has been an important choice for consumers because of its high protein rate and for Western Blacksea farmers because of its easy marketability. Pseudocercospora griseola, causing angular leaf spot on beans, which was firstly detected in Çaycuma district of Zonguldak province, Turkey, causes serious damage on local varieties (Ozan 2009). The most important reason limiting studies on this fungus is its slow growth or not growing on artificial media. P. griseola is a slow-growing and difficult-isolated mitosporic fungus. Conventional mycological isolation methods were tried but it was not possible to grow the fungus. In this study, the most suitable isolation methods for this fungus were investigated by trying new methods and modified isolation methods used for some other fungi belonging to the same genus.

___

  • CABI/EPPO 1997. Smith I. M.; Mcnamara D. G.; Scott P. R.; Holderness M. Quarantina Pests for Europe, 2nd edition. CAB International, Wallingford, UK.
  • Cardona-Alvarez C. and Walker J. C. 1956. Angular leaf spot of bean. Phytopathology 46: 610-615.
  • CMI 1986. Phaeoisariopsis griseola. CMI Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria No.847. Wallingford, UK: CAB International.
  • Correa-Victoria F. J. 1988. Pathogenic Variation Production of Toxic Metabolities and Isoenzyme Analysis in Phaeoisariopsis griseola (Sacc.) Fer. PhD Thesis. Michigan,
  • Frison E. A. Bos L. Hamilton R. I. Mathur S. B. Taylor J. D. 1990. FAO/IBPGR technical guidelines fort he safe movement of legume germplasm. Rome, Italy; FAO/IBPGR, 88 pp.
  • Golato C. and Meossi E. 1972. A serious leaf infection of beans, Phaseolus vulgaris L. in Ethiopia. Rivista di Agricoltura Subtropicale e Tropicale. 66 (4-6/7-9):135-138.
  • Guzman P. Gilbertson R. L. Nodari R. Johnson W. C. Temple S. R. Madela D. Mkandawire A. B. C. and Gebts P. 1995. Characterization of variability in the fungus Phaeoisariopsis griseola suggests coevulation with the common bean (Phaseolus vulgaris). Phytopathology 85, 600-607 p.
  • Hagedorn D. J. and Wade E. K. 1974. Bean rust and angular leaf spot in Wisconsin. Plant Disease Reporter, 58: 330-332.
  • Inglis D. A. Hagedorn D. J. and Rand R. E. 1988. Use of dry inoculum to evaluate beans for resistance to anthracnose ang angular leaf spot. Plant Disease 72: 771-774 p.
  • Liebenberg M. M. S. and Pretorius Z. A. 1997. A rewiew of angular leaf spot of common bean (Phaseolus vulgaris L.). African Plant Protection 3, 81-106.
  • Mora B. Pastor-Corrales M. Zambolin L. Chaves G. 1985. Determining yield losses in French bean from angular leaf spot. Phytopathology, 75: 1178.
  • Ozan S. 2009. Batı Karadeniz Bölgesinde Örtü Altında Fasülyelerde Köşeli Yaprak Lekesine Neden Olan Phaeoisariopsis griseola (Sacc.) Ferrarıs (=Isariopsis griseola Sacc.)‘nın Tespiti. Türkiye 3. Bitki Koruma Kongresi Bildirileri. 15-18 Temmuz 2009, Van..
  • Pyndji M. 1997. Techniques of Isolation, Maintenance, Production, and Inoculation of Phaeoisariopsis griseola.
  • Saettler A. W.,Correa F. J., 1988. Transmission of Phaeoisariopsis griseola by bean seed. Journal of Seed Tecnology, 12 (2):133-142
  • Saettler A. W. 1991. Angular leaf spot. In: Hall, R., ed. Compendium of Bean Diseases. St. Paul, MN, USA; APS Press, 15-6.
  • Santos-Filho H. P. Ferraz S. Sediyama C. S.1976. Isolamento e esporulaçao ‗‘in vitro‘‘ de Isariopsis griseola Sacc. Experientiae 22: 175-193 p.
  • Sartorato A. 1988. Angular leaf spot. Cultura do feijoeiro: fatores que afetam a productividade (ed. Zimmermann, M. J. De O., Rocha, M., yamada, T.) Piracicaba, Brazil. Associacao Brasileira para Pesquisa da potassa e do Fosfate, 491-501.
  • Sartorato A. 2002. Identification of P. griseola pathotypes from five States in Brazil. Fitopatologia Brasileira 27: 078-081p.
  • Schwartz H. F. Correa V. F. Pineda D. D. A. Otoya M. M. Katherman M. J. 1981. Ascohyta, angular lef spot white fly leaf spots in Colombia. Plant Disease 65, 494-496.
  • Schwartz H. F. Pastor-Corrales M. A. and Singh S. P.1982. New sources of resistance to anthracnose and angular leaf spot of beans (Phaseolus vulgaris L.). Euphytica 31: 741-754 p.
  • Smith I. M. Mcnamara D. G. Scott P. R. Holderness M. 1997. Quarantine Pests for Europe. Second Edition.
  • Stenglein A. S. Aulicino M. Arambarri A. M., Balatti A. P. 2006. New Media for Increasing Sporulation and Germination of P. griseola. Eoropean Journal of Plant Pathology, 115: 173-180p.
  • Wortmann C. S. Kirkby R. A. Eledu C. A. and Allen D. J. 1998. Atlas of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Production in Africa. Cali. Colombia: CIAT: