Kültürü yapılan çipuralarda (Sparus aurata L.) görülen Listonella anguillarum enfeksiyonu üzerine bir çalışma

2003 yılının Kasım ayında, Türkiye'nin Ege Bölgesi Bodrum civarında bulunan bir çipura ve Avrupa levrek balığı işletmesinde günlük %3 ölüm oranı ile bir enfeksiyon gözlendi. Bu dönem esnasında deniz suyu tuzluluğu %o33 ve deniz suyu sıcaklığı 18-19 °C idi. Hasta balıklarda, iştah kaybı, durgunluk, pul kaybı, deride özellikle yüzgeçlerin tabanında kanama, karaciğer, böbrek ve dalağın solgunluğu, karaciğerde kanama, bağırsakta sarımsı-kanlı sıvı gözlendi. Teşhis için, denizdeki kafesten ölmek üzere olan çipura balıkları (sekiz adet) (300-350 g) alındı ve aseptik teknikle otopsi yapıldı. Bakteriyel ekimler iç organlar ile kandan hazırlandı ve %1.5 NaCI eklenen BHIA da kültürü yapıldı. 22 °C de 48 saatlik inkübasyon sonrası, besiyerinde gelişen koloniler morfolojik, fizyolojik ve biyokimyasal özellikler için incelendi. API 20E sistemi ile Mono-Va aglütinasyon kiti de çalışmaya dahil edildi. Bakteriyolojik çalışmanın sonucu olarak, hasta çipura balıklarından izole edilen suş Listonella anguillarum'um bir susu olarak identifiye edildi. Hasta balıklarda dikkati çeken başlıca histolojik bulgu; dalağın hemopoietik elementlerinde nekroz, hem dalak hem de böbreğin melanomakrofaj merkezlerinde hemosiderin birikimi oldu. Tedavi, yem içine katılan oksitetrasiklin (75 mg/kg/canlı ağırlık) ile yapıldı. Balık kayıpları tedavinin yedinci gününde durdu.

Anahtar Kelimeler:

Listonella anguillarum, Türkiye, antibiyotikler, tanı, oksitetrasiklin, Ege Denizi, Pagrus aurata, balık hastalıkları, enfekte olma, izolasyon, tedavi

A study on Listonella anguillarum infection occurred in cultured gilt-head sea beam (Sparus aurata L.)

It was observed an infection with daily 3% mortality in a gilt-head sea bream and European sea bass farm located in around of Bodrum, Aegean Region of Turkey in November 2003. The seawater salinity was 33%o and the seawater temperature was 18-19 °C during this term. In the diseased fish, loss of appetite, lethargie, loss of scale, haemorrhagy in the skin, especially at the base of fins, paleness of the liver, kidney, and spleen, haemorrhagy on the liver, yellowish-bloody fluid in the gut were observed. For diagnosis, gilt-head sea bream (eight fish) (300-350 g) were taken from cage in the sea and autopsied under sterile conditions. Bacterial inocula were made from visceral organs and blood and cultured on BHIA added with 1.5 % NaCI. After incubation at 22 °C for 48 hours, colonies grown on medium were examined for morphological, physiological, and biochemical properties. API 20E system and Mono-Va agglutination kit were also included in the study. As a result of the bacteriological study, the isolated strain from the diseased gilt-head sea bream was identified as a Listonella anguillarum strain. The main histological finding in the diseased fish was noted necrose of haemopoietic elements of spleen and hemosiderin deposits in the melanomacrophage centers of both spleen and kidney. Treatment was done with oxytetracycline added in feed (75 mg/kg/live weight). Fish losses lasted in the seventh day of the treatment.

Keywords:

Listonella anguillarum, Turkey, antibiotics, identification, oxytetracycline, Aegean Sea, Pagrus aurata, fish diseases, infection, isolation, therapy,

PDF

___

Actis, L. A., Tolmasky, M. E., J. H. Crosa (1999): Vibriosis, p. 523-557. P. T. Woo and D. W. Bruno [eds.], Fish Disease and Disorders, Volume 3: Viral, Bacterial and Fungal Infections, CABI.

Austin, B.and A. Austin (1993): Fish Pathogens Disease in Farmed and Wild Fish, Chichester, Ellis Horwood.

Austin, B.and A. Austin (1999): Fish Pathogens Disease in Farmed and Wild Fish, Third (Revised) edition, Chichester, Ellis Horwood.

Baron, E. J., L. R. Peterson, S. M. Finegold (1994): Bailey & Scott's Diagnostic Microbiology, 9th ed., USA, Mosby-Year Inc.

Barry, A. L. and C. Thornsberry (1985): Manual of Clinical Microbiology, Washington.

Bauer, A. W., W. M. Kirby, J. C. Sherris and M. Turck (1966): Antibiotic susceptibility testing by a standardised single disk method. American Journal of Clinical Pathology. 45:36-49.

Baumann, P. and A. L. Fumiss (1994): Vibrionaceae, p. 190-272. W. R. Hensyl [ed.], Bergey's Manual Of Determinative Bacteriology. Williams and Wilkins, Baltimore.

Bullock, A. M. (1989): Laboratory methods, p. 374405. R. J. Roberts [ed.], Fish Pathology. London, Bailliere Tindall.

Candan, A. A (1991): Çipura (Spams aurata L. 1758) yetiştiriciliğinde mevsimsel olarak görülen hastalık etkenlerinin tesbit ve tedavi yönteminin geliştirilmesi. Fen Bil. Enst. İstanbul Univ. 76 s.

Candan, A, 1993: Çipura (Sparus aurata L. 1758) balıklarında Vibrio anguillamm infeksiyonu. Türk Mikrobiyoloji Cem. Dergisi, 23:25-27.

Christofilogiannis, P. (1993): The veterinary approach to sea-bass and sea-bream, p. 379-385. L. Brown [ed.], Aquaculture for veterinarians: fish husbandry and medicine. Oxford, Pergamon Press.

Collins, R. (1993): Principles of disease diagnosis, p. 69-89. L. Brown [ed.], Aquaculture for veterinarians: fish husbandry and medicine. Oxford, Pergamon Press.

Culling, C. F. A. (1963): Handbook of Histopathological Techniques. London, ButterWorthCo.Ltd.

Çağırgan, H. ve O. Yüreklitürk (1996): Kültürü yapılan çipura {Spams aurata) ve levrek (Dicentrarchus labrax) balıklarında görülen bakteriye! hastalıkların teşhis ve tedavisi üzerine bir araştırma. Bornova vet. Kontr. ve Araşt. Ens. Md. Derg., 21:113-122.

Frerichs, G. N. and R. J. Roberts (1989): The bacteriology of teleost, p. 320- 336. R. J. Roberts [ed.], Fish Pathology. London, Bailliere Tindall.

Grizes, L, R. Ceusters, F. Ollevier (1991): The use of API 20E for the identification of Vibrio anguillamm and V. ordalii. J. of Fish Diseases, 14: 359-365.

Korun, J, (2004): Kültür levrek balıklarında {Dicentrarchus labrax L.) vibriosis ve pasteurellosis'in bazı diagnostik kitler ye laboratuvar yöntemleri ile teşhisi üzerinde bir çalışma. Fen Bil. Enst., İstanbul Univ., 143 s.

Kubilay, A. and G. Uluköy (2004): First isolation of Staphylococcus şpidermidis from cultured gilthead sea bream (Spams aurata) in Turkey. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol., 24(3): 137-143.

NCCLS (National Committee for Clinical Laboratory Standard of Antimicrobial Susceptibility) (2003): Performance Standards for Antimicrobial Disc Susceptibility Tests: Approved Standard-Eighth Edition. NCCLS Document M2-A8, Pennsylvania, Wayne.

Noga, E. J (2000): Fish Disease, Diagnosis and Treatment. Ames, First Iowa State University Press Edition.

Romalde, J. L, B. Magarinos, B. Fouz, I. Bandin, S. Nunez, A. E., and

Toranzo A. E (1995): Evaluation of BIONOR Mono-kits for rapid detection of bacterial fish pathogens. Dis. aquat. Org., 21:25-34.

Schneider, J. and G. Rheinheimer, G (1988): Isolations Methods, p. 73-95, Methods in Aquatic Bacteriology, Chiester, England, John Wiley and Sons Ltd.

Stavric, S. and B. Buchanan (1995): The isolation and enumaration of Vibrio vulnificus from fish and seafoods, Laboratory Procedure, MFLP-73, Health Protection Branch, Ottowa, Government of Canada.

Tanrıkul, T. T., H. Çağırgan, E. Tokşen (2004): Levreklerden (Dicentrarchus labrax L. 1758) İzole Edilen Vibrio Türlerinin API 20E Yöntemiyle İdentifikasyonu. E. Ü. Su Ürünleri Dergisi, 21(3-4):243-247.

Thornley, M (1960): The differantiation of Pseudomonas from other Gram-negative bacteria on the basis of arginine metabolism, J. Appl. Bacteriol., 23:37-52.

Timur, G. and J. Korun (2004): First outbreak of vibriosis in farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Turkey. Journal of Fisheries & Aquatic Sciences, 18(18): 1-9.

Toranzo, A. E. and J. L. Bârja (1990): A review of the taxonomy and seroepizootiology of Vibrio anguillarum, with special reference to aquaculture in the northwest of Spain. Dis. aquat. Org., 9:73-82.