End to side anastomoz için adım adım laboratuvar kılavuzu: tavuk kanadı modeli

Amaç: In vitro örnekler, deneyimsiz beyin cerrahları ve asistanların baypas cerrahisi eğitimine giriş için uygun modellerdir. Bu makale, laboratuvarda end to side anastomoz uygulamaları için bir rehber sağlamayı amaçlamaktadır. Gereç ve yöntem: Tavuk kanatları yerel bir süpermarketten satın alındı ve ‘end to side’ anastomoz yapmak için kullanıldı. Mikroskaslar, düğümleme pensleri ve 10/0 sütürler kullanıldı ve prosedürün tüm aşamaları bir masaüstü mikroskobu ile gerçekleştirildi. Bulgular: Nöroşirürji pratiğinde ustalık gerektiren bir alan olan baypas cerrahisi için gerekli deneyim, ucuz ve kolay ulaşılabilir bir yöntem olan tavuk kanadı modelinde elde edilebilir. Sonuç: Tavuk kanadı modeli, bir mikrocerrahi laboratuvarında ‘end to side’ anastomoz eğitiminde pratik ve uygulanabilir bir yöntemdir.

A step by step laboratory guide for end to side anastomosis: chicken wing model

Background: In vitro specimens are suitable models for the introduction of bypass surgery training of inexperienced neurosurgeons and residents. This paper aims to provide a guide for the applications of end to side anastomosis in the laboratory. Materials and Methods: The chicken wings were purchased from a local supermarket and used to perform end to side anastomosis. The microscissors, knotting forceps and 10/0 sutures were used, and all stages of the procedure were performed under a desktop microscope. Results: The experience required for bypass surgery, which is a skillful field in neurosurgery practice, can be obtained in the chicken wing model, which is a cheap and easily accessible method. Conclusion: The chicken wing model is a practical and feasible method in training the end to side anastomosis in a microsurgery laboratory.

___

  • Reference 1. Yasargil MG, Yonekawa Y. Results of microsurgical extraintracranial arterial bypass in the treatment of cerebral ischemia. Neurosurgery 1977; 1:22–24. https://doi.org/10.1227/00006123-197707000-00005
  • Reference 2. Wessels L, Hecht N, Vajkoczy P. Bypass in neurosurgery-indications and techniques. Neurosurg Rev. 2019;42(2):389-393. https://doi.org/10.1007/s10143-018-0966-9
  • Reference 3. Hwang G, Oh CW, Park SQ, Sheen SH, Bang JS, Kang HS. Comparison of different microanastomosis training models: Model accuracy and practicality. J Korean Neurosurg Soc 2010;47:287-290. https://doi.org/10.3340/jkns.2010.47.4.287
  • Reference 4. Nam SM, Shin HS, Kim YB, Park ES, Choi CY. Microsurgical training with porcine thigh infusion model. J Reconstr Microsurg 2013;29(5):303-306. https://doi.org/10.1055/s-0033-1333623
  • Reference 5. Hino A. Training in microvascular surgery using a chicken wing artery. Neurosurgery 2003;52(6):1495-1497. https://doi.org/10.1227/01.neu.0000065174.83840.62
  • Reference 6. Abla AA, Uschold T, Preul MC, Zabramski JM. Comparative use of turkey and chicken wing brachial artery models for microvascular anastomosis training. J Neurosurg 2011 ;115(6):1231-1235. https://doi.org/10.3171/2011.7.JNS102013
  • Reference 7. Inoue T, Tsutsumi K, Adachi S, Tanaka S, Saito K, Kunii N. Effectiveness of suturing training with 10-0 nylon under fixed and maximum magnification (x 20) using desk type microscope. Surg Neurol 2006; 66:183-187. https://doi.org/10.1016/j.surneu.2005.11.064
  • Reference 8. Matsumura N, Hayashi N, Hamada H, Shibata T, Horie Y, Endo S. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surg Neurol 2009; 71:616-620. https://doi.org/ 10.1016/j.surneu.2007.12.024
  • Reference 9. Mutoh T, Ishikawa T, Ono H, Yasui N. A new polyvinyl alcohol hydrogel vascular model (KEZLEX) for microvascular anastomosis training. Surg Neurol In. 2010;23;1:74. https://doi.org/10.4103/2152-7806.72626
  • Reference 10. Creighton FX, Feng AL, Goyal N, Emerick K, Deschler D. Chicken thigh microvascular training model improves resident surgical skills. Laryngoscope Investig Otolaryngol 2017;2(6):471-474. https://doi.org/10.1002/lio2.94
  • Reference 11. Schoeff S, Hernandez B, Robinson DJ, Jameson MJ, Shonka DC Jr. Microvascular anastomosis simulation using a chicken thigh model: Interval versus massed training. Laryngoscope 2017; 127(11):2490-2494. https://doi.org/10.1002/lary.26586
  • Reference 12. Higurashi M, Qian Y, Zecca M, Park YK, Umezu M, Morgan MK. Surgical training technology for cerebrovascular anastomosis. J Clin Neurosci 2014;21(4):554-558. https://doi.org/10.1016/j.jocn.2013.07.029
  • Reference 13. Couceiro J, Castro R, Tien H, Ozyurekoglu T. Step by step: microsurgical training method combining two nonliving animal models. J Vis Exp 2015;99:e52625. https://doi.org/10.3791/52625
  • Reference 14. Kim BJ, Kim ST, Jeong YG, Lee WH, Lee KS, Paeng SH. An efficient microvascular anastomosis training model based on chicken wings and simple instruments. J Cerebrovasc Endovasc Neurosurg 2013;15(1):20-25. https://doi.org/10.7461/jcen.2013.15.1.20
  • Reference 15. Vazkocy P, Horn P, Schmiedek P. Standard superficial temporal artery-middle cerebral artery bypass surgery in hemodynamic cerebral ischemia: Indication and technique. Operative Techniques in Neurosurgery 1999;2(3): 106-115. https://doi.org/10.1016/S1092-440X(99)80002-4
  • Reference 16. Tamrakar K. Learning Microvascular Anastomosis in Low Socioeconomic Vascular Models During Residency. Cureus 2017;9(4):e1199. https://doi.org/10.7759/cureus.1199
Pamukkale Tıp Dergisi-Cover
  • ISSN: 1309-9833
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 2008
  • Yayıncı: Prof.Dr.Eylem Değirmenci
Sayıdaki Diğer Makaleler

Lityum kullanımına bağlı gelişen akneiform ilaç erüpsiyonu

Koray SOYTÜRK, Çiçek HOCAOĞLU

Kontrastlı çok dedektörlü bilgisayarlı tomografi ile akut spontan izole renal arter diseksiyonunun saptanması

Esra ÖZGÜL, Furkan KAYA

Myelofibrozis hastalarında Ruxolitinib kullanımı: tek merkez deneyimi ve JAK-2 allel yükü ile Ruxolitinib yanıtı arasındaki ilişki

Erdal KURTOĞLU, Mesut GÖÇER

Nadir bir akut karın nedeni: apendiks vermiformis divertiküliti

Sezai KANTAR

18-25 yaş arası genç Türk bireylerdeki melanositik nevüslerin klinik ve dermatoskopik özelliklerinin incelenmesi

Aylin ÖZTÜRK, Ercan ARCA, Melis GÖNÜLAL

Çocuk ve ergen psikiyatri polikliniğine başvuran olguların beden kitle indeksi, beslenme tutum ve davranışları: duygusal ve davranışsal sorunlarla ilişkisi

Ömer BAŞAY, Bürge KABUKÇU BAŞAY, Cihan ERBAY, Onur COŞKUN, Burçin SAĞIROĞLU

Otolog kıkırdak greftinin cerrahi prp ve fasya ile kombinasyonun histopatolojik etkileri.

Özgen KIVANÇ, Mirza YILDIRIM, Yeliz ARMAN KARAKAYA, Gulbin ERDEM, Erkan KURAL, Barış ALTAYLI

The impact of elevated cumulative anthracycline dose on cardiac repolarization changes in children with cancer: a prospective study

Sultan AYDIN KÖKER, Yeşim OYMAK, Timur MEŞE, Murat M. YILMAZER, Bengü DEMİRAĞ, Rahmi ÖZDEMİR, Tuba Hilkay KARAPINAR, DİLEK İNCE, Raziye VERGİN

Nadir bir akut karın nedeni: apendiks vermiformis divertikülit

Sezai KANTAR

Meme kanseri trucut iğne biyopsi ve rezeksiyon materyallerinde yeni moleküler sınıflama, tanı ve hormon reseptörlerinin durumu tutarlı mı?

Yeliz ARMAN KARAKAYA, Sevda YILMAZ, Hande KARABAŞ