Kayseri, Kırşehir, Nevşehir ve Aksaray illeri buğday ekim alanlarındaki Rhizoctonia tür ve anastomosis gruplarının belirlenmesi

Kayseri, Kırşehir, Nevşehir ve Aksaray illerine ait buğday üretim alanlarında Rhizoctonia tür ve anastomosis grupları ile patojenisitelerini belirlemek amacıyla 2011 ve 2012 yılı üretim sezonunda survey yapılmış, kök ve kök boğazında lezyon ile cüceleşme belirtisi gözlenen bitkilerden ve rizosfer toprağından 320 bitki ve toprak örneği toplanmıştır. Bitkilerden yapılan izolasyonlar sonucunda 45, topraktan yapılan izolasyonlar sonucunda ise 8 olmak üzere toplam 53 adet Rhizoctonia izolatı elde edilmiştir. Yapılan klasik teşhis çalışmaları ve DNA sekans analizleri sonucunda elde edilen multinükleat izolatların Rhizoctonia solani AG 3, AG 4 HG II, AG 5 ve Waitea circinata var. circinata anastomosis gruplarına ait olduğu belirlenmiştir. Binükleat Rhizoctonia izolatları ise AG I ve AG K olarak tespit edilmiştir. Yapılan patojenisite testleri sonucunda AG 4 HG II ve Waitea circinata var. circinata grupları buğdayda patojen bulunmuş ve en virulent grubun ise AG 4 HG II olduğu belirlenmiştir.

Determination of Rhizoctonia species and anastomosis groups in wheat production areas in Kayseri, Kırşehir, Nevşehir and Aksaray provinces

For the purpose of determination of the pathogenicity, anastomosis groups and species of Rhizoctonia in wheat production areas in Kayseri, Kirsehir, Nevsehir and Aksaray provinces, survey were conducted in the 2011 and 2012 growing seasons, 320 plant samples were collected from the plants with lesions on root and crown, stunting plants and also 320 samples collected from rhizosphere soil. Totally 53 Rhizoctonia isolates were obtained, 45 isolates as a result of isolations performed from the plants and 8 isolates from the soil. It was determined that the multinucleate isolates obtained as a result of conventional identification studies and DNA sequence analysis belonged to Rhizoctonia solani AG 3, AG 4 HG II, AG 5 and Waitea circinata var. circinata anastomosis groups. Binucleate Rhizoctonia isolates were detected as AG I and AG K. As a result of pathogenicity tests, AG 4 HG II and Waitea circinata var circinata groups were found to be pathogen on wheat and it was determined that the most virulent group is AG 4 HG II.

___

  • Aktaş H., Yıldırım A.F. ve Sayın L. 1995. Konya İli arpa ekiliş alanlarında arpa verimini ve kalitesini etkileyen kök ve kök boğazı çürüklüğü hastalık etmenlerinin saptanması üzerinde araştırmalar. Arpa-Malt Sempozyumu, Konya. 253-259.
  • Aktaş H., Bostancıoğlu H., Tunalı B. ve Bayram E., 1996. Sakarya yöresinde buğdayda kök ve kök boğazı çürüklüğüne neden olan hastalık etmenlerinin belirlenmesi ve bu etmenlerin buğday yetiştirme teknikleri ile ilişkileri üzerinde araştırmalar, Bitki Koruma Bülteni, 36(3-4), 151-167.
  • Aktaş H., Kınacı E.,Yıldırım A.F., Sayın L. ve Kural A. 1999. Konya yöresinde hububatta sorun olan kök ve kökboğazı çürüklüğü etmenlerinin hububatta verim komponentlerine etkileri ve mücadelesi üzerinde araştırmalar.Orta Anadoluda Hububat Tarımının Sorunları ve Çözüm Yolları Sempozyumu. 392-403.
  • Anonim 2013. TÜİK. http://www.tuik.gov.tr. Bandoni R.J. 1979. Safranin O as a rapid strain for fungi. Mycologia, 71, 873-874.
  • Bora T. ve Karaca İ. 1970. Bitki Hastalıkları Surveyi, Kültür Bitkilerinde Hastalığın ve Zararın Ölçülmesi, Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Yardımcı Ders Kitabı, Yayın No: 167, Ege Üniversitesi Matbaası, Bornova. 43p. Carling DE. and Summer D.R., 1992. Rhizoctonia in: Singleton L.L., Mihail, J.D. ve Rush, C.M. (eds.) Methods for Research on Soilborne Phytopathogenic Fungi, APS Press, St. Paul Minnesota. pp:157-165.
  • Carling DE., Pope, E. J., Brainard KA., and Kuninaga,S., 2002. Characterization of AG-13 ,a newly reported anastomosis group of Rhizoctonia solani. Phytopatology 92: 893- 899.
  • Clarkson J. D. S. and Cook R. J. 1983. Effect of sharp eyespot on yield loss in winter wheat. Plant Pathol. 32: 421-428.
  • Cromey M.G., Buthler R.C. and Boddington H.J., Moorhead A.R. 2002. Effects of sharp eye spot on yield of wheat (Triticum aestivum) N.Z.Crop Hortic.Sci. 30:9-17.
  • Demirci E. and Döken M.T. 1993. Anastomosis groups and pathogenicity of Rhizoctonia solani Kühn isolates from potatoes in Erzurum-TÜRKİYE. J. Türk. Phytopathology 22 (2-3): 95-102.
  • Demirci E. and Döken M.T. 1995. Anastomosis groups of Rhizoctonia solani Kühn and binucleate Rhizoctonia isolates from various crops in Turkey, J. Türk. Phytopathology 24(2):57-62.
  • Demirci E. 1998. Rhizoctonia species and anastomosis groups isolated from barley and wheat in Erzurum, Turkey, Plant Pathology, 47(1): 10-15.
  • Demirci E. and Kordali S. 1999. Rhizoctonia species and anastomosis groups from corn kernels in Turkey, Plant Diseases, 3(9): 879.
  • Demirci E., Eken C. and Zengin H. 2002. First Report of Rhizoctonia solani and binucleate Rhizoctonia from Johnsongrass in Turkey, Plant Pathology,51(3): 391.
  • Eken C. and Demirci E. 2003. Identification and pathogenicity of Rhizoctonia solani and binucleate Rhizoctonia anastomosis groups isolated from forage legumes in Erzurum, Turkey, Phytoparasitica, 31(1): 76-80.
  • Eken C. and Demirci E. 2004. Anastomosis groups and pathogenicity of Rhizoctonia solani and binucleate Rhizoctonia isolates from bean in Erzurum, Turkey, Journal of plant pathology, 86(1): 49-52.
  • Erper İ, Karaca G.H., Turkkan M. and Ozkoc I. 2006. Characterization and pathogenicity of Rhizoctonia spp. from onion in Amasya, Turkey, Journal of Phytopathology, 154 (2): 75-79.
  • Frugal-Wegrzycka H., Adamiak J. and Adamiak E. 1996. Some characteristic of Rhizoctonia spp. in sharp eyespot of wheat, Acta Mycologica, 31(2): 199-208.
  • Ichielevich- Auster M., Sneh B., Koltin Y. and Barash I. 1985. Suppression of damping-off caused by Rhizoctonia species by a nonpathogenic isolate of R. solani. Phytopathology, 75: 1080-1084.
  • Karaca G.H., Özkoç İ. and Erper İ. 2002. Determination of Anastomosis grouping of Rhizoctonia solani Kühn isolates associated with bean plants grown in Samsun/Turkey. Pakistan Journal of Biological Sciences. 5(4): 434-437.
  • Karman, M. 1971. Bitki koruma araştırmalarında genel bilgiler, denemelerin kuruluşu ve değerlendirme esasları, Bornova-İzmir, 279s. Kim D.S., Cook R. J. and Weller D.M. 1997. Bacillus sp. L324-92 for biological control of three root diseases of wheat grown with reduced tillage. Phytopathology 87: 551- 558.
  • Kronland, W.C. and Stanghellini, M.E. 1988. Clean slide technique for the observation of anastomosis and nuclear condition of Rhizoctonia solani. Phytopathology, 78, 820- 822.
  • Kural İ., Sagir A. and Tatli F. 1994. Characterization and pathogenicity of anastomosis groups of Rhizoctonia solani isolated from cotton in Southeastern Turkey. 9. Congress of the Mediterranean Phytopathological Union. September 18-24, 1994, Kuşadası Aydın, Türkiye. p. 117- 120.
  • Lee SB and Taylor JW. (1990) Isolation of DNA from fungal mycelia and single spores. Pages 282-287 in: PCR protocols: A guide to methods and applications. M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White, eds. Academic Press, New York. Macnish G.C. and Neate, S.M 1996. Rhizoctonia Bare of Cereals. Plant Dis. 80 (9): 965- 971.
  • Meyer L., Wehner F.C., Nel L.H. and Carling D.E. 1998. Characterization of the crater disease strain of Rhizoctonia solani, Phytopathology, 88(4): 366-371.
  • Muratçavuşoğlu, N., 1995. Ankara İli buğday ekim alanlarında kök ve kökboğazı hastalıklarına neden olan fungal etmenlerin saptanması üzerinde araştırmalar, (Yüksek lisans tezi), Ankara Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü. Ogoshi A., Cook R.J. and Bassett E.N. 1990. Rhizoctonia species and anastomosis groups causing root rot of wheat and barley in the Pacific Northwest. Phytopathology, 80(9): 785-788.
  • Paulitz T.C., Smith J.D. and Kidwell K.K., 2003. Virulence of Rhizoctonia oryzae on wheat and barley cultuvars from the Pacific Northwest, Plant Disease, 87(1): 51- 55.
  • Priyatmojo A, Yamauchi R., Kageyama K. and Hyakumachi M. 2001. Grouping of binucleate Rhizoctonia anastomosis group D (AG-D) isolates into subgroups I and II based on whole-cell fatty acid compositions. J. Phytopathology, 149, 421- 426.
  • Ravanlou A. and Banihashemi Z. 2002. Isolation of some anastomosis groups of Rhizoctonia associated with wheat root and crown in Fars Province, Iranian Journal of Plant Pathology, 38(3/4), Pe151-157, en 67-69. Roberts F.A. and Sivasithamparam K. 1986. Identity and pathogenicity of Rhizoctonia spp. associated with bare patch diseases of cereals at field site in Western Australia. Europan Journal of Plant Pathology, 92(5): 185-195. S
  • haron M., Kuninaga S., Hyakumachi M., Naito S. and Sneh B. 2008. Classification of Rhizoctonia spp. using rDNA-ITS sequence analysissupports the genetic basis of the classical anastomosis grouping. Mycoscience, 49, 93–114.
  • Sneh B., Burpee L. and Ogoshi A. 1994. Identification of Rhizoctonia species. APS Pres, p.133, St.Paul, Minnesota. Sneh B., Jabaji-Hare S., Neate S. and Dijst G. 1996. Rhizoctonia species: Taxonomy, molecular biology, ecology, pathology and diseases control. 1-559.
  • Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M and Kumar S. 2011. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony method. Molecular Biology and Evolution 28: 2731-2739.
  • Tewoldemedhin, Y.T., Lamprecht, S.C., McLeod, A. and Mazzola, M. 2006. Characterization of Rhizoctonia spp. recovered from crop plants used in rotational cropping systems in the Western Cape Province of South Africa. Plant Disease, 90(11): 1399-1406.
  • Tunali B., Nicole J.M., Hodson D., Uçkun Z., Büyük O., Erdurmuş D., Hekimhan H., Aktaş H., Akbudak M.A. and Bağcı S.A. 2008. Root and crown root fungi associated with spring,facultative,and winter wheat in Turkey. Plant Disease, 92:1299-1306.
  • Ünal ve Dolar 2013. İç Anadolu Bölgesi buğday üretim alanlarındaki Rhizoctonia türlerinin anastomosis gruplarının ve bazı buğday çeşitlerinin reaksiyonlarının belirlenmesi. (Doktora tezi), Ankara Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü. White TJ, Bruns TD, Lee S and Taylor J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal genes form phylogenetics. In: PCR protocols. (ed. by Innis MA, Gelfrand DH, Sninsky JJ, White TJ). p. 315-322. Academic Press. San Diego. California. Xia Z.J. and Li Q.X. 1989. Preliminary study on aetiology of sharp eyespot in wheat and barley in Jiangsu, China, Acta Phytopathologica Sinica, 19(3): 135-139.
  • Yildiz A. and Döken M.T.,2002. Anastomosis group determination of Rhizoctonia solani Kuhn (Telemorph :Thanatephorus cucumeris) isolates from tomatoes grown in Aydın, Turkey and their disease reaction on various tomato cultivars. Journal of Phytopathology -Phytopathologısch Zeithschrift, 150(10): 526-528.
Bitki Koruma Bülteni-Cover
  • ISSN: 0406-3597
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1952
  • Yayıncı: Zirai Mücadele Merkez Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü
Sayıdaki Diğer Makaleler

Çanakkale ve Balıkesir illeri yumuşak çekirdekli meyve ağaçları ve yabancı otlar üzerinde bulunan bitki zararlısı akar türleri

İsmail KASAP, Sultan ÇOBANOĞLU, Serkan PEHLİVAN, Şahin KÖK, Gökhan BAŞTUĞ

Nosema chaetocnemae Yaman & Radek, 2003 (Microspora)'ın iki farklı izolatının morfolojik ve enfeksiyon özellikleri açısından karşılaştırılması

Mustafa YAMAN, Beyza Gonca GÜNER

Diyarbakır ili meyve ağaçlarında zararlı Eriophyoidea (Acarina) türlerinin saptanması

Emel GEÇER, Evsel DENİZHAN

Nosema chaetocnemae Yaman & Radek, 2003 (Microspora)’ın iki farklı izolatının morfolojik ve enfeksiyon özellikleri açısından karşılaştırılması

Mustafa YAMAN, Beyza Gonca GÜNER

Pamuk Yaprakbiti, Aphis gossypii Glover (Hemiptera: Aphididae)'nin farklı karpuz çeşitlerindeki popülasyon gelişimi

Yunus BAYRAM, Erol BAYHAN

Batı Karadeniz Bölgesiʼnde fasulye köşeli yaprak lekesi hastalığının kimyasal mücadelesi üzerinde araştırmalar

Sirel OZAN, Senem TÜLEK, Fikret DEMİRCİ

Pamuk Yaprakbiti, Aphis gossypii Glover (Hemiptera: Aphididae)’nin farklı karpuz çeşitlerindeki popülasyon gelişimi

Yunus BAYRAM, Erol BAYHAN

Nosema chaetocnemae Yaman & Radek, 2003 (Microspora)’ın iki farklı izolatının morfolojik ve enfeksiyon özellikleri açısından karşılaştırılması

Mustafa YAMAN, Beyza Gonca GÜNER

Eskişehir ili arpa ekim alanlarında görülen fungal yaprak ve başak hastalıklarının görülme sıklıklarının ve yoğunluklarının belirlenmesi

Esra ÇELİK, Aziz KARAKAYA

Kayseri, Kırşehir, Nevşehir ve Aksaray illeri buğday ekim alanlarındaki Rhizoctonia tür ve anastomosis gruplarının belirlenmesi

Filiz ÜNAL, Harun BAYRAKTAR, A. Faik YILDIRIM, Kadir AKAN, F. Sara DOLAR