Ülkü İNCEOĞLU, Dicle DÖNMEZ, ÖZHAN ŞİMŞEK, TURGUT YEŞİLOĞLU, Yıldız Aka KAÇAR

Carrizo Sitranjı (Citrus sinensis Osb. X Poncirus trifoliata Raf. var “Carrizo”)'nın Kök Eksplantlarından Bitki Rejenerasyonunun Optimizasyonu

Turunçgillerin sahip olduğu tür çeşitliliği ve ekonomik değeri nedeniyle klasik ıslah çalışmaları yanında bitki biyoteknolojisi çalışmaları da ön plana çıkmaktadır. Bu çalışmada, Carrizo sitranjının in vıtro koşullarda çimlendirilen tohumlarından gelişen kök eksplantları kullanılarak kökten bitki rejenerasyonunun optimizasyonu hedeflenmiştir. Carrizo sitranjına ait kök eksplantları BA (6-Benzil amino purin) ve NAA (1- Naftalenasetik asit)’nın 21 farklı konsantrasyonunu içeren MS (Murashige ve Skoog, 1962) besin ortamında kültüre alınmışlardır. Çalışma sonucunda en iyi kallus oluşumu 0.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA; 1 mg/L BA+0.5 mg/L NAA; 1 mg/L BA+1 mg/L NAA; 0.5 mg/L BA; 1.5 mg/L BA+0.5 mg/L NAA; 1.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA; 2 mg/L BA veya 2.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA içeren MS ortamından elde edilmiştir (%100). Sürgün oluşumunda 0.5 mg/L BA, 1 mg/L BA+0.5 mg/L NAA veya 2 mg/L BA içeren MS ortamlarında %100 başarı elde edilmiştir.

Optimization of Plant Regeneration from Root Explants of Carrizo citrange (Citrus sinensis Osb. X Poncirus trifoliata Raf. var “Carrizo”)

The diversity and economic value of citrus encourages study of plant biotechnology in addition to classical plant breeding. In this study, optimization of plant regeneration was aimed at using root explants developed from the seeds of Carrizo citrange germinated in in vitro conditions. Root explants of Carrizo citrange were cultured in MS nutrient medium containing 21 different concentrations of BA (6-Benzyl amino purine) and NAA (1-Naphthaleneacetic acid). The best callus formation (100%) was obtained from MS medium containing 0.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA; 1 mg/L BA+0.5 mg/L NAA; 1 mg/L BA+1 mg/L NAA; 0.5 mg/L BA; 1.5 mg/L BA+0.5 mg/L NAA; 1.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA; 2 mg/L BA or 2.5 mg/L BA+1.5 mg/L NAA. In shoot formation, 100% success was achieved in MS media containing 0.5 mg/L BA, 1 mg/L BA+0.5 mg/L NAA or 2 mg/L BA.

PDF

___

Aka Kaçar, Y., Şimşek, Ö., Dönmez, D., Boncuk, M., Yeşiloğlu, T., Ollitrault, P. 2014. GeneticRelationships of Some Citrus Genotypes based on The Candidate Iron Chlorosis Genes. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 38(3):340-347.
Aka Kaçar, Y., Mendi, Y., Şimşek, Ö., Boncuk, M., 2011. In Vitro Plant Regeneration of ‘Carrizo’ Citrange and ‘Cleopatra’ Mandarin by Organogenesis. Proc. IInd IS on Citrus Biotechnology Eds.: A. Gentile and S. La Malfa. Acta Hort. 892, ISHS.
Beloualy, N. 1991. Plant Regeneration from Callus Culture of Three Citrus rootstocks. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 24(1):29-34.
Biçen, B. 2008. Bazı Turunçgil Anaçlarında Farklı Eksplant Kaynağı ve Besi Ortamlarının Somatik Embriyogenesis Üzerine Etkileri Çukurova Üniversitesi Fen bilimleri Enstitüsü Yüksek Lisans Tezi s: 87. Fen Bilimleri Enstitüsü. Adana. Yüksek Lisans Tezi. s: 104.
Bordon, Y., Guardıola, J.L., Garcıa-Luıs, A. 2000. Genotype Affects The Morphogenic Response In Vitro of Epicotyl Segments of Citrus Rootstocks. Annals of Botany. 86:159-166, 2000.
Choi, P.S., Kim, Y.D., Choi, K.M., Chung, H.J., Choi, D.W., Liu, J.R. (2004). Plant regeneration from hairy-root cultures transformed by infection with Agrobacterium rhizogenes in Catharanthus roseus. Plant cell reports, 22(11):828-831.
Costa, M.G.C., Alves, V.S., Lani, E.R.G., Mosquim, P.R., Carvalho, C.R., Otoni, W.C. 2004. Morphogenic Gradients of Adventitious Bud and Shoot Regeneration in Epicotyl Explants of Citrus. Scientia Horticulturae. 100(1-4):63-74.
Donmez, D., Simsek, O., Izgu, T., Aka Kacar, Y., Yalcin Mendi, Y. 2013. Genetic Transformation in Citrus. The Scientific World Journal. 1-8.
Kasprzyk-Pawelec, A., Pietrusiewicz, J., Szczuka, E. 2015. In vitro Regeneration Induced in Leaf Explants of Citrus limon L. Burm cv.‘Primofiore’. Acta Scientiarum Polonorum. Hortorum Cultus. 14(4).
Mumtaz, S., Ahmad, T., Hafiz, I.A., Yaseen, M., Abbasi, N.A. 2015. Callogenesis and Plant Regeneration from Leaf Explants of Citrus Cultivars. Pakistan Journal of Agricultural Sciences. 52(4).
Murashige, T., Skoog, F. 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiologia plantarum. 15(3):473-497.
Murashige, T., Tucker, D. P. H.: Growth factor requirement of Citrus tissue culture. Proc. 1st Int. Citrus Symp. vol. 3, p. 1155– 1161, H. D. Chapman, ed. Univ. Calif. Riverside: Publ. Dept. 1969.
Polat, İ. (2009). Üç Yapraklı (Poncirus trifoliata L.) ve Üç Yapraklı Melezleri Grubu Turunçgillerin Genetik Akrabalık ve Farklılıklarının SSR Moleküler Markırlarla Tanımlanması. Derim. 26(2):30-41.
Rosa, Y.B.C.J., Monte-Bello, C.C., Dornelas, M.C. (2016). In vitro organogenesis and efficient plant regeneration from root explants of Passiflora suberosa L.(Passifloraceae). In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 52(1):64- 71.
Savita, V., Virk, G.S., Nagpal, A. 2010. Effect of Explant Type and Different Plant Growth Regulators on Callus Induction and Plantlet Regeneration in Citrus jambhiri Lush. Environ. International Journal of Science and Technology. 5:97- 106.
Shende, C.B., Manik, S.R. 2015. Direct Regeneration of Shoot From Axillary Bud of Citrus reticulate. International Journal of Agricultural Technology. 11(6):1401- 1409.
Tuzcu, Ö., Yıldırım, B., Düzenoğlu, S., Bahçeci, İ. 1999. Değişik Turunçgil Anaçlarının Washington Navel ve Moro Kan Portakal Çeşitlerinin Meyve Verim ve Kalitesi Üzerine Etkileri. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 23:213-222.