Türkiye’de Yetiştirilen Bazi Kişlik Buğday Çeştilerinin Olgunlaşmamiş Embriyo Kültürüne Verdiklerin Cevaplarin Belirlenmesi

Agrobacterium kaynaklı gen aktarımı ve in vitro kültür çalışmaları için kullanılacak eksplant genotipin seçimi önemli bir adımdır. Düşük doku kültürü performansı, stabil gen aktarılabilecek buğday genotiplerin sayısını sınırlamaktadır. 14 kışlık buğday çeşitinin olgunlaşmamış embriyo kültürü, kalus üretimi ve bitki rejenerasyonuna tepkisi değerlendirilmiştir. Kültüre alınaneksplantların kallus oluşum frekansı %45 (cv. Sürak) ve % 99.54 (cv. Bobwhite) arasındaki oranlarda gözlenmiş ve genotipik farklılık önemli olmuştur. Somatik embriyogenesis aracılığıyla bitki rejnerasyonu 4 haftalık kallus oluşum periyodundan sonra tüm çeşitlerin kalluslarında görülmüştür. Kültüre alınan embriyo başına en yüksek bitkicik sayısı Sivas-111/33 (8.66), Kıraç-66 (7.36), Haymana 79 (6.77) and Conkesme 79 (6.56) çeşitlerinde meydana gelmiştir. Dört kışlık buğday genotipi (Sivas-111/33, Kirac-66, Haymana 79, and Conkesme) yüksek rejenerasyon potansiyeline sahip olmaları nedeniyle Agrobacterium aracılığıyla gen aktarım çalışmalarında kullanmak için seçilmiştir.

-

Selecting the explant genotypes is crucial step in in-vitro culture and Agrobacterium-mediated transformationsystem due to its host range specificity. Poor tissue culture performance is restricting the number of wheat genotypes that can bestably transformed. Response of fourteen cultivars of winter wheat (Triticum aestivum L.) to immature embryo culture, callusproduction and plant regeneration was evaluated. A significant (p

___

  • Aydin, M., M. Tosun, K. Haliloglu, 2011. Plant regeneration in wheat mature embryo culture. African Journal of Biotechnology. 10(70): 15749-15755.
  • Ahloowalia, B.S., 1982. Plat regeneration from callus culture in wheat. Crop Sci. 22: 405-410
  • Barro, F., A. Martin, P.A. Lazzeri, P. Barceló, 1999. Medium optimization for efficient somatic embryogenesis and plant regeneration from immature inflorescences and immature scutella of elite cultivars of wheat, barley and tritordeum. Euphytica 108:: 161–167.
  • Boulton, M.I., H. Steinkellner, J. Donson, P.G. Markham, D.I. King, K.W. Davis, 1989.: Mutational analysis of the virionsense genes of maize streak virus. J. Gen. Virol.: 70: 23092323.
  • Carman, J.G., N.E. Jefferson, W.F. Campbell, 1988. Induction of Embryogenic Triticum aestivem L. calli. I. Quantification of genotype and culture medium effects, Plant Cell Tiss. Organ Cult. 10: 101-107.
  • Cheng, M., E. Joyce, S. Pang, H. Zhou, C.M. Hironaka, D.R. Duncan, T.W. Conner, Y. Wan, 1997. Genetic Transformation of Wheat Mediated by Agrobacterium tumefacience. Plant Physiol. 115: 971-980.
  • Deambrogio, E., P.J. Dale, 1980. Effect of 2,4-D on the frequency of regenerated plants in barley and on genetic variability between them. Cereal Res. Commmun. 8: 417–423.
  • Fennell, S., N. Bohorova, M. Ginkel, J. Crossa, D. Hoisington, 1996. Plant regeneration from immature embryos of 48 elite CIMMYT bread wheats, Theor. Appl. Genet. 92: 163–169.
  • Galiba, G., G. Kovacs, J. Sutka, 1986. Substitution analysis of plant regeneration from callus culture in wheat. Plant Breed. 97: 261-263.
  • Haliloglu, K., P.S. Baenziger, 2003. Agrobacterium tumefaciens mediated wheat transformation. Cereal Research Communications 31: 9-16.
  • Haliloglu, K., A. Ozturk, M. Tosun, and S. Bulut, 2005. Relationship between tissue culture and agronomic traits of winter wheat. Cereal Res. Commun. 33,469-476.
  • He, D.G., T.M. Yang, J. Bertram, K.J. Scott, 1990. The histological development of the regenerative tissue derived from cultured immature embryos of wheat. Plant Sci. 68: 103-107.
  • Kaleikau, E.K., R.G. Sears, B.S. Gill, 1989. Control of tissue culture response in wheat (Triticum aestivum L.) Theor. Appl. Genet. 78: 783-787.
  • Machii, H., H. Mizuno, T. Hirabayashi, H. Li, T. Hagio, 1998. Screening wheat genotypes for high callus induction and regeneration capability from anther and immature embryo cultures. Plant Cell Tissue Organ Cult. 53: 67–74.
  • Maddock, S.E., V.A. Lancaster, R. Risiott, J. Franklin, 1987. Plant regeneration from cultured immature embryos and inflorences of 25 cultivars of wheat. Exp. Bot. 34: 915-920.
  • Maheshwary, N., K. Rajyalakshmi, K. Baweja, S.K. Dhir, C.N. Chowdhry, S.C. Maheshwary, 1995. In vitro Culture of Wheat and Genetic Transformation- Retropect and Prospect. Critical Reviews in Plant Sciences 14: 149-178.
  • Mathias, R., E. Atkinson, 1988. In vitro expression of genes affecting whole plant phenotype. The effect of Rht/Gai alleles on the callus culture response of wheat (Triticum aestivum L. em. Thell). Theor. Appl. Genet. 75: 474–479.
  • Mathias, R.J., K. Fukui, 1986. The effect of specific chromosome and cytoplasm substitutions on the tissue culture response of wheat (Triticum aestivum) callus. Theor. Appl. Genet., 71: 797–800.
  • Mathias, R.J., E.S. Simpson, 1986. The interaction of genotype and culture medium on the tissue culture responses of wheat (Triticum aestivum L.) callus. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 7: 31-37
  • Mooney P.A., P.B. Goodwin, E.S. Dennis, D.J. Liewellyn, 1991. Agrobacterium tumefacience-gene transfer into wheat tissues. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 25: .209-218.
  • Murashige. T., F. Skoog, 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant., 15: 473-497.
  • Murata, M., 1989. Effect of auxin and cytokinin on induction of sister chromatid exchanges in cultured cells of wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 78: 521–524.
  • Ozias-Akins, P., I.K. Vasil, 1982. Plant regeneration from cultred immature embryos and inflorescences of Triticum aestivum L. (wheat) evidence for somatic embryogenesis. Protoplasma 110: 95-105.
  • Redway, F.A., V. Vasil, I.K. Vasil, 1990. Characterization and regeneration of wheat embyogenic cell suspension cultures, Plant Cell Reports 8: 714-718.
  • SAS Institute Inc., 1996. SAS/STAT Software. Changes and Enhancements Through Release 6.11. SAS Institute, Cary, NC.
  • Sears, R.G., E.L. Deckard, 1982. Tissue culture variability in wheat. callus induction and plant regeneration. Crop Sci. 22: 546-550.
  • Shimada T., 1978. Plant regeneration from the callus induced from wheat embryos. Jpn. J. Genet., 53: 379–385.
  • Takumi S., T. Shimada, 1997. Variation in transformation frequencies among six common wheat cultivars through particle bombardment of scutellar tissues. Genes Genet. Syst. 72: 63–69.
  • Viertel K., A. Schmid, M. Iser, D. Hess, 1998. Regeneration of German spring wheat varities from embryogenic scutellar callus. J. Plant Physiol. 152: 167–172.
  • Waller R.A., D.B. Duncan, 1969. A Bayes rule for the symmetric multiple comparison problems. J. Am. Stat. Assoc. 64:14841503.
  • Weeks J.T., O.D. Anderson, A.E. Blechl, 1993. Rapid production of multiple independent lines of fertile transgenic wheat (Triticum aestivum), Plant Physiology. 102:1077-1084.
  • Zhou H., J.W. Arrowsmith, M.E. Fromm, C.M. Hironaka, M.L. Taylor, D. Rodriguez, M.E. Pajeau, S.M. Brown, C.G. Santino, J.E. Fry, 1995. Glyphosate-tolerant CP4 and GOX genes as a selectable marker in wheat transformation. Plant Cell Rep., 15:159-163.
Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-9036
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Yayıncı: AVES Yayıncılık
Sayıdaki Diğer Makaleler

Response of current winter wheat cultivars grown in Turkey to immature embryo culture

Murat AYDIN, Kamil HALILOGLU, Esin ŞAHIN, İsmail BEZIRGANOĞLU, Metin TOSUN

Türkiye’de Yetiştirilen Bazi Kişlik Buğday Çeştilerinin Olgunlaşmamiş Embriyo Kültürüne Verdiklerin Cevaplarin Belirlenmesi

Kamil HALILOGLU, Kamil HALİLOĞLU, İsmail BEZİRGANOĞLU, İsmail BEZIRGANOĞLU, Murat AYDIN, Metin TOSUN, Esin ŞAHİN

Distribution of the tribe osmiini bees (Hymenoptera: Megachilidae) of Turkey part I: The genera Heriades, Stenoheriades, Hofferia and Hoplitis

Hikmet ÖZBEK

Erzurum-Sakalıkesik Ovası Sulama Suyu İhtiyacının Bilgisayar Programı Kullanılarak Belirlenmesi

Sebahattin KAYA, Ali ÖZEDENGİZ, Ali ÖZDENGİZ

Ceylanpınar Tarım İşletmesinde Yetiştirilen Siyah Alaca Sığırların Ömür Boyu Verim Performanslarının Belirlenmesi

Hamit BOĞOKŞAYAN, Galip BAKIR

Düzey 1 Bölgelerine Göre Yoksulluk ve Göç Durumu

Nuray DEMİR, Seda YAŞA, Vedat DAĞDEMİR

Sediment Tane Büyüklüğüne Bağlı Bulanıklık- Konsantrasyon İlişkilerinin Belirlenmesi

Ramazan MERAL, Sebahattin KAYA, Yasin DEMİR, Azize DOĞEN DEMİR

Türkiye’de Tarımsal Kooperatifçiliğin İller Açısından Çok Boyutlu Analizi

Ahmet ŞAHİN, Murat CANKURT, Cihat GÜNDEN, Bülent MİRAN

Türkiye’de Osmiini Tribüsüne Giren Arı Türleri (Hymenoptera: Megachilidae)’nin Dağılışları, Kontrol Listesi ve Zoocoğrafik Özellikleri

Hikmet OZBEK

Serin İklim Tahıllarında Virüs Kaynaklı Gen Susturma: BSMV Kullanımı

Emre İLHAN, A. Hakan EREN, Mustafa ERAYMAN